Для обеспечения асептической работы необходимо хорошо знать возможные источники попадания микробов в рану. Это два источника: экзогенный и эндогенный.

Экзогенной считается инфекция , попадающая в рану из внешней среды: из воздуха - пыль, капли жидкости (воздушно-капельный путь);

с предметами, соприкасающимися с раной: инструментарий, белье, перевязочный материал, руки хирурга (контактный путь);

Имплантационный путь передачи инфекции . Имплантация – внедрение, вживление в организм больного искусственных чужеродных материалов и приспособлений с определенной лечебной целью. Источниками имплантационной инфекции являются:

Шовный материал;

Дренажные трубки;

Катетеры;

Протезы клапанов сердца, сосудов, суставов и т.д.;

Специальные металлические приспособления (скобки и скрепки из сшивающих аппаратов, спицы, шурупы, пластины для остеосинтеза);

Кава - фильтры, спирали, стенты;

Трансплантированные органы.

Эндогенной называется инфекция, источник которой находится в организме больного. Источники эндогенной инфекции:

 кожные покровы больного;

 желудочно-кишечный тракт;

 ротовая полость;

 очаги «дремлющей» инфекции: кариозные зубы, воспалительные заболевания мочевыводящих путей, хронический тонзиллит, хронический бронхит и т.д.

Пути попадания эндогенной инфекции в рану:

 по кровеносным сосудам (гематогенный),

 по лимфатическим сосудам (лимфогенный);

 непосредственный (контактный)

Профилактика эндогенной инфекции включает выявление возможных очагов эндогенной инфекции и их санация перед выполнением плановой операции.

Если при обследовании выявлен источник эндогенной инфекции (кариес, аднексит и др.), плановую операцию нельзя выполнять до ликвидации воспалительного процесса . После перенесенного инфекционного заболевания запрещается выполнение плановой операции в течение 2-х недель после полного выздоровления.

Принципы организации и планирования хирургического отделения

Принцип соблюдения правил асептики и антисептики лежит в основе организации хирургического стационара . Большинство больниц строится в зеленых, наиболее чистых районах. Хирургические отделения не должны располагаться на первом этаже стационара, по возможности палаты должны быть рассчитаны на 1-2 человек. Площадь палат общехирургического профиля определяется из расчета 6,5 - 7,5 м 2 на одну койку при высоте помещения не менее 3 м и ширине не менее 2,2 м.. Стены должны быть выложены плиткой или окрашены краской. Поверхность стен, полов и потолков помещений должна быть гладкой, без дефектов, легкодоступной для влажной уборки и обработки моющими и дезинфицирующими средствами. Покрытия пола должно плотно прилегать к основанию. Сопряжение стен и полов должно иметь закруглённое сечение, стыки должны быть герметичными. Полы должны быть каменными или заливными, либо покрыты линолеумом.

При использовании линолеумных покрытий края линолеума у стен должны быть подведены под плинтуса. Швы, примыкающих друг к другу листов линолеума, должны быть пропаяны. В вестибюлях полы должны быть устойчивы к механическому воздействию (мраморная крошка, мрамор, мозаичные полы и др).

Ориентация окон палат и лечебно-диагностических кабинетов хирургического отделения может быть любая, соотношение площади окон и пола должна составлять 1:6, 1:7. Температура воздуха в палатах -18-20 0 С, влажность воздуха - 50-60%.

Вентиляция воздуха достигается путем открытия форточек. Для обеззараживания воздуха применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. Лампы должны гореть в течение всего времени уборки палат и не менее часа после нее, так как во время уборки в воздух поднимается большое количество бактерий.

В помещениях хирургических стационаров больниц, построенных по современным типовым проектам, устраивается кондиционирование воздуха и механическая приточно-вытяжная вентиляция. Подачу приточного воздуха следует осуществлять сверху вниз, причем расположение приточных и вытяжных отверстий должно быть таким, чтобы исключалась возможность образования в помещении невентилируемых мест.

Мебель должная быть легкой, без сложной конфигурации поверхностей, иметь колесики для передвижения. Количество мебели следует максимально ограничивать в соответствии с потребностями.

В структуру хирургического отделения входят: палаты для больных, пост палатной медсестры, процедурный кабинет, чистая и гнойная перевязочные, санитарная комната, лечебные и диагностические кабинеты, кабинеты заведующего отделением и старшей медсестры, ординаторская, сестринская.

В хирургическом отделении должны быть туалеты, ванная, клизменная, отдельно должны быть туалет и душ для медицинского персонала.

Для кормления больных предусмотрена столовая. В хирургическом отделении кормление больных проводится, согласно, диеты, назначенной врачом. Кормление тяжёлобольных осуществляется средним и младшим медперсоналом.

Важное, значение для профилактики внутригоспитальной инфекции имеет правильное размещение больных в отделении. Чёткое разделение «чистых» и «гнойных» больных.

Обязательно каждому больному выделяют индивидуальные предметы ухода (подкладные судна, утки), которые дезинфицируют после использования каждым больным.

В структуре хирургического отделения с коечным фондом на 30 и более пациентов необходимо иметь две перевязочные - для проведения «чистых» и «грязных» перевязок . В хирургическом отделении, имеющем до 30 коек, допускается наличие одной перевязочной. Очередность перевязок планируется с учетом чистоты раны. При подготовке к работе перевязочной до начала работы проводится влажная уборка помещения перевязочной с обработкой всех поверхностей дезинфицирующими средствами.

Перевязочный стол для пациента (кушетка) дезинфицируют способом протирания и накрывают чистой простыней (пеленкой) перед каждой новой перевязкой.

Медицинская сестра и врач должны работать в халате (при необходимости – и в фартуке), перчатках, шапочке, маске. Предпочтительны халаты однократного применения.

Снятие повязки проводится перевязочной сестрой в чистых (нестерильных) перчатках.

Лечащий врач (оперирующий хирург) проводит перевязку в стерильных перчатках, которые меняет при каждой перевязке.

Все предметы со стерильного перевязочного стола берутся стерильным корнцангом (пинцетом).

По окончании перевязки отработанный материал, использованные перчатки, халаты сбрасывают в ёмкость для сбора отходов класса «Б», и в дальнейшем подвергают дезинфекции и утилизации.

Инструменты многократного применения после перевязки дезинфицируют способом погружения в дезинфицирующий раствор, затем подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации (в ЦСО – при его наличии в лечебной организации).

В конце рабочего дня проводят уборку перевязочной дезинфицирующими средствами. Для обеззараживания воздуха в перевязочных, процедурных кабинетах применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. Лампы должны гореть в течение всего времени уборки и не менее часа после нее. Бактерицидная лампа создает вокруг себя стерильную дозу до 2 - 3 метров. Один раз в неделю проводят генеральную уборку в перевязочной, о чем делают запись в журнале регистрации уборок.

Контроль обсемененности разных объектов и воздуха в хирургических отделениях осуществляется 1 раз в месяц. Выборочный контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, рук хирурга, кожи, операционного белья и др. проводят 1 раз в неделю.

Для профилактики воздушно-капельной инфекции большое значение имеет соблюдение правил личной гигиены медперсоналом, отстранение от работы сотрудников с простудными и гнойничковыми заболеваниями.

Согласно приказу № 720 1 раз в 3 месяца проводится обследование медперсонала на носительство стафилококка в носоглотке. При положительном ответе сотрудник отстраняется от работы, в течение 3-4 дней закапывает в нос антисептик, регулярно проводит полоскания зева, после чего у него повторно берут мазок из носоглотки.

В профилактике внутригоспитальной инфекции в хирургическом отделении играет роль правильная утилизация отходов и уборка отделения.

Все отходы делятся на 5 групп и подлежат утилизации после соответствующей подготовки.

Понятие об асептике

Асептика – основной закон хирургии. Основоположником асептики считается И.Бергман.Основной закон асептики требует, чтобы всё, что соприкасается с раной, было стерильным, т.е. обеспложенным, лишённым микроорганизмов. Разумеется, это требование полностью относится и к различным пункциям, вливаниям и инструментальным методам исследования, когда оптические приборы вводятся в просвет внутренних органов. Трудами многих поколений хирургов, фармацевтов, медицинских, в первую очередь операционных сестёр, химиков, инженеров, и других специалистов разработана стройная система мероприятий, направленных на практическое осуществление этого закона. Чтобы предупредить загрязнение микробами (инфицирование ран), нужно, прежде всего, знать источники поступления инфекции и в соответствии с их особенностями применить те или другие наиболее подходящие методы.

Принято различать два источника хирургической инфекции: экзогенный (внешний) и эндогенный (внутренний). Хотя эндогенная инфекция встречается значительно реже экзогенной, хирурги постоянно помнят о такой возможности и в предоперационном периоде тщательно изучают больного, чтобы выявить очаги вялотекущей гнойной инфекции и ликвидировать их до операции.

Методы антисептики:

· химический

· физический

· организационно-профилактический

Антисептикой теперь называют мероприятия по борьбе с микроорганизмами, находящимися и развивающимися в органах и тканях больного.

Основоположником систематизированной борьбы с возбудителем в ране является английский хирург Джозеф Листер (1827-1912), который в 1867 г. положил начало антисептическому направлению в хирургии. По его распоряжению в операционной широко применяли карболовую кислоту для обработки раны, инструментов, на рану накладывали семислойную шелковую повязку, пропитанную карболовой кислотой, распыляли в воздухе операционной. В результате таких действий значительно уменьшилось количество нагноений ран, но наблюдались отравления карболовой кислотой у пациентов и персонала.

В современном понимании антисептика – система мероприятий, направленных на уничтожение или снижение количества микроорганизмов в ране, патологическим образованием или организме в целом.

Методы антисептики:

1. Химический – обработка раны растворами антисептиков и применение их для наложения повязок.

2. Физический – дренирование, высушивание раны.

3. Механический – ПХО.

4. Биологический – применение антибиотиков, сывороток (противостолбнячная, противогангренозная), анатоксинов (столбнячный).

ОСНОВНЫЕ АНТИСЕПТИЧЕСКИЕ ВЕЩЕСТВА

1. Галлогеносодержащие вещества:

а) хлорид (Chloracidum) – 0,5% раствор для обработки рук, перчаток, гнойной раны.

б) хлорамин Б (Chloraminum Б) – 3% - для обработки рук, перчаток, гнойной раны, предметов ухода. Для генеральной уборки применяют 5% раствор хлорамина.

в) Sol. Jodi spirituosae 5%, 10% - для обработки краев раны. В операционной в настоящее время раствор йода не применяют, т.к. пары йода оказывают токсическое действие на персонал, вызывая патологию щитовидной железы. Его заменяют раствором йодоната.

г) Jodonati – водный раствор смеси алкисульфата натрия с йодом. 1% раствор разводят перед применением в 3 раза дестиллированной водой.

д) Sol.Lugoli – раствор люголя, раствор йода в спиртовом или водном растворе йодистого калия. Применяют для обработки кетгута.

2. Красители

а) Риванол (Aethacridini lacnas) – этакридина лактат 1:500 – 1:1000 для обработки гнойных ран.

б) Бриллиантовый зеленый (Viridis nitentis) – 0,1 -2% спиртовой раствор применяют для обработки краев ран.

в) Метиленовый синий (Methylenum coerulum) – 1-3% спиртовой раствор. Для лечения ожогов, небольших гнойных очагов, контрастирования свищевых ходов при их иссечении, лечение сепсиса.

3. Окислители

а) Kalii permanganatis – 0,1-0,5% раствор для промывания ран, с целью дезинфекции, как дезодорант 2-5% раствор – дубящее действие

б) Acidum boricum – применяется в ранах с синегнойной палочкой в виде 2% водного раствора, мазей, присыпок.

в) Перекись водорода (Sol. Hydrogeni peroxidati) 33% раствор – пергидроль – для приготовления моющего раствора, а так же является исходным для приготовления растворов другой концентрации: 9%, 6% - для обработки ран, предметов ухода при развитии анаэробной инфекции, для дезинфекции и стерилизации инструментов, 3% раствор (Dilutae) – для промывания гнойных ран. In vitro nigro.

4. Соли тяжёлых металлов.

а) Сулема – ртути хлорид (Hydrargiri dichloridum) – ЯД!!! – подкрашивать раствор!

Раствор 1:1000 для обработки предметов ухода, перчаток

б) Diocidum – 1:5000 раствор для обработки рук

1:1000 для обработки инструментов

Сулему и диоциды в настоящее время не применяют из-за их токсичности.

в) Нитрат серебра (Argenti nitrat) 1:500 – 1:1000 – для промывания ран, мочевого пузыря 10% раствор (ляпис) для прижигания избыточных грануляций.

г) Protargolum – оказывает вяжущее, антисептическое, противовоспалительное действие 1-3% раствор применяется для промывания мочевого пузыря

д) Colfargolum – 0,2% раствор применяется для промывания гнойной раны. Препараты серебра необходимо хранить в темноте.

5. Спирты

а) Этиловый спирт (Sp. aethylici) – применяется 96%, а чаще 70% и 80% для обработки рук, инструментов, наложения повязок.

б) Спирт камфорный (Sp. camphorati) – 40% применяется для профилактики пролежней.

в) Нашатырный спирт (Sol. Ammonii caustici) – по своему составу не является спиртом, относится к щелочам. Выпускается в виде 10% и 25%. Применяется 0,5% раствор для туалета кожи вокруг раны, обезжиривания предметов ухода (биксы и т.д.).

6. Формальдегиды

а) Формалин (Formaldehydum solutum) = 40% раствор формальдегида. Входит в состав тройного раствора, который в некоторых местах используют для обработки предметов ухода.

Формалин – 20 г

Карболовая кислота – 10 г

Карбонат натрия – 30 г

Дистиллированная вода – 1000

7. Фенол

а) Фенол – карболовая кислота (Acidum carbocilum) – применяли 3-5% раствор для обработки предметов ухода, инструментов, перчаток, входит в состав тройного раствора. В настоящее время не используется.

б) Деготь (Picis liguidae) – обладает антисептическим, противовоспалительным действием. Входит в состав мази Вишневского. Применяется для лечения гнойных ран и воспалительных процессов.

8. Производные нитрофуранов

а) Фурацилин (Furacilinum) применяется в виде 1:5000 раствора для лечения гнойных ран. Отличается действием на аэробную флору.

б) Фурагин (Furaginum) – 0,1% раствор чаще применяют в торакальной хирургии при заболевании бронхов.

9. Сульфаниламиды

а) Streptocidum – 0,5-1,0 применяют для лечения рожистого воспаления

б) Sulfadimezinum – таблетированный препарат, применяют при лечении хирургической инфекции.

в) Sulfadimethoxinum – см. пункт б.

Часто сульфаниламидные препараты применяют в сочетании с антибиотиками для потенцирования их действия.

10. Антибиотики

Необходимо помнить, что при проведении АБ-терапии учитывается:

· чувствительность микрофлоры

· отсутствие аллергии у пациента

· назначают в больших дозах

· курсы применения могут быть длительными, не только 7 дней

· пути введения различны: per os, подкожно, внутримышечно, внутривенно, в рану в виде растворов и мазей.

а) пенициллин

б) канамицин

в) линкомицин

г) таревит

д) цефазолин

е) цефаперазон

История развития метода

Понятие об асептике

Асептика - система профилактических мер, направ­ленных на предотвращение попадания микробов в раны, ткани, органы, полости тела больного (раненого) при хи­рургических операциях, перевязках, эндоскопии и дру­гих лечебных и диагностических манипуляциях.

Асептика включает:

■ стерилизацию инструментов, материалов, операцион­ного белья, приборов;

■ обработку рук хирурга;

■ соблюдение особых правил и приемов работы при про­ведении операций, исследований и т. д.;

■ осуществление специальных санитарно-гигиенических и организационных мероприятий в лечебном учреж­дении.

Метод асептики является дальнейшим развитием ме­тода антисептики и тесно связан с ним.

Основоположники асептики - немецкие хирурги Бергманн (Е. Berdmann) и Шиммельбуш (С. Schimmelbusch), а в России - М. С. Субботин и П. И. Дьяконов.

В 1890 г. на X Международном конгрессе врачей в Берлине Бергманн провозгласил основной закон асепти­ки: все, что приходит в соприкосновение с раной, долж­но быть свободно от бактерий.

При дальнейшей разработке вопросов асептики оказа­лось, что обеспечить профилактику нагноения раны одним методом асептики не представляется возможным - необ­ходимо комплексное применение асептики и антисептики.

Для обеспечения асептики в последние годы стали использовать такие физические факторы , как радиоак­тивное излучение, ультрафиолетовые лучи, ультразвук и электроток разной частоты и др.

Различают два источника хирургической инфекции: экзогенный и эндогенный . Экзогенный источник находит­ся в среде обитания больного, то есть во внешней среде, эндогенный - в организме больного.

Профилактика имплантационной инфекции заключа­ется в тщательной стерилизации приборов, шовного ма­териала, дренажей, эндопротезов и т. п. Эта инфекция может быть дремлющей и проявлять себя через длитель­ный период времени, при ослаблении защитных сил орга­низма человека.

Особое значение профилактика имеет при пересадке органов и тканей, так как при этом происходит ослабле­ние защитных сил организма. Асептика - закон хирур­гии. Достигается она применением физических факторов и химических веществ.

Высокая температура, вызывающая денатурацию белков микробной клетки, наиболее часто применялась в прежнее время.

Чувствительность микробов к высокой температуре за­висит от их вида, штамма и состояния микробной клетки (делящиеся и молодые бактерии более чувствительны, спо­ры более устойчивы к высокой температуре). В щелочной и кислой среде поражаемость микробных клеток высокая. Холод задерживает размножение микробных клеток, не оказывая выраженного бактерицидного действия.

Ультрафиолетовые лучи способны поражать микро­бов, находящихся в воздухе, на коже, тканях человека, на стенах и полу помещений. Гамма-лучи - это радиоак­тивные изотопы 60 СО и 137 Cs. Стерилизация проводит­ся в специальных камерах в дозе 1,5-2,0 млн р. Стерили­зуется белье, шовный материал, системы для перелива­ния крови и др. Работают специально обученные люди, обеспеченные мощными защитными приспособлениями. Особенно полезна лучевая стерилизация предметов из пластмасс, не выдерживающая высокой температуры и пара под давлением.

Термическая стерилизация, то есть высокой темпера­турой, является основным методом обеззараживания, применяемого в медицинской практике. Верхняя грани­ца вегетирующих микроорганизмов 50 °С, а спор столб­нячной палочки - в кипящей воде (до 60 мин). Наибо­лее эффективным видом стерилизации любой формы бак­терий является воздействие пара иод давлением. Через 25 мин погибает любая инфекция, а наиболее распрост­раненная - через 1-2 мин (132 °С). Обжиг применяется лишь в лабораторной практике для стерилизации плас­тиковых игл и петель, используемых в бактериологичес­ких лабораториях и в чрезвычайных ситуациях - при угрозе жизни больного.

Стерилизация сухим жаром проводится в сухожаровых стерилизаторах при температуре 180-200 °С. Стери­лизуются инструменты, посуда и др. Этот вид стерилиза­ции широкое распространение нашел в зубоврачебной практике.

Кипячение производится в кипятильниках: переносных и стационарных. Используют кипяченую дистиллирован­ную воду с добавлением гидрокарбоната натрия из расчета 2,0 г на 100,0 г воды. Получается 2%-ный раствор, и тем­пература кипения воды увеличивается на 1-2 °С.

Стерилизация паром под давлением проводится в ав­токлавах . Они могут быть стационарные и походные. В зависимости от давления пара (кгс/см 2) температура под­нимается до строго определенных цифр, например, при давлении пара 1,1 кгс/см 2 температура в автоклаве под­нимается до 121,2 °С; при 2 кгс/см 2 - до 132,9 °С и т. д. Отсюда и экспозиция стерилизации от 60 мин до 15 мин.

Проводится контроль стерильности . Он может быть бактериологическим, техническим и термическим. Бак­териологический метод самый точный, но результат вы­дается слишком поздно. Берут образцы стерилизовавше­гося материала и сеют на питательные среды. Техничес­кие методы используются при установке нового автоклава. Термические методы используются повседневно. Они основаны либо на изменении цвета вещества, либо на плав­лении вещества.

Проба Микулича: на белой фильтровальной бумаге пишут простым карандашом «стерильно» и смазывают поверхность бумажки 10%-ным раствором крахмала. Ког­да бумажка подсохнет, ее обрабатывают раствором Люголя. Бумажка темнеет, слово «стерильно» не видно. Ее закладывают в толщу стерилизуемого материала в авто­клав. При 100 °С крахмал соединяется с йодом и слово «стерильно» снова становится видно. Экспозиция долж­на быть не менее 60 мин.

Более эффективны пробы с порошкообразными веще­ствами, которые плавятся при определенной температу­ре: сера- при 111-120 °С, резорцин - 110-119 °С; бен­зойная кислота - 121 °С, мочевина - 132 °С; фенацетин - 134-135 С.

Для контроля сухожаровой стерилизации: тиомочевина - 180 °С; янтарная кислота----180-184 °С; аскорбино­вая кислота - 187-192 °С; барбитал - 190-191 °С; пило­карпина гидрохлорид - 200 °С.

Лекция 7. Асептика: стерилизация химическими веществами

1. Понятие и разновидностями химической стери­лизации

Химические вещества, применяемые для стерилиза­ции, должны быть бактерицидными и не портить инст­рументы и материалы, с которыми они соприкасаются.

В последнее время все ширее стала использоваться стерилизация холодным способом , с помощью антисеп­тических веществ. Причиной этого служит то обстоятельство, что в медицинской практике используются предметы, изготовленные из пластических масс. Их нельзя стерилизовать термическими методами. К ним относятся аппараты искусственного кровообращения (АИК), аппараты для наркоза, искусственной вентиля­ции легких и т. д. Разбирать такие аппараты сложно и трудно, да и не под силу медицинским работникам. Ста­ло быть нужны методы, позволяющие стерилизовать аппарат либо в целом виде, либо разобранном на круп­ные узлы.

Химическую стерилизацию можно провести как с по­мощью растворов, включая аэрозоли (растворы ртути, хло­ра и т. д.), так и газами (пары формалина, смесь ОБ).

АСЕПТИКА (греческий а- отрицательный +septikos гнойный, вызывающий нагноение) - система профилактических мероприятий, направленных против возможности попадания микроорганизмов в рану, ткани, органы, полости тела больного (раненого) при хирургических операциях, перевязках, эндоскопии и других лечебных и диагностических манипуляциях. Асептика включает:

а) стерилизацию инструментов, материалов, приборов и пр.,

б) специальную обработку рук хирурга,

в) соблюдение особых правил и приемов работы при производстве операций, исследований и т. п., г) осуществление специальных санитарно-гигиенических и организационных мероприятий в лечебном учреждении.

Метод асептики является дальнейшим развитием метода антисептики и тесно связан с ним (см. Антисептика).

Основоположники асептики - немецкие хирурги Бергманн (E. Bergmann) и Шиммельбуш (C. Schimmelbusch), а в России - М. С. Субботин, П. И. Дьяконов.

В 1890 году на X Международном конгрессе врачей в Берлине Бергманном был впервые провозглашен основной закон асептики: все, что приходит в соприкосновение с раной, должно быть свободно от бактерий.

Вначале метод асептики был направлен на предохранение больного и персонала от вредного действия антисептических препаратов (карболовая кислота, сулема и др.). Физические факторы, уничтожая микробов на всем, что соприкасается с раной, позволяли избежать непосредственного воздействия на рану токсичных антисептиков.

В дальнейшем выяснилось, что одна асептика не в состоянии обеспечить профилактику нагноений и что необходимо комплексное применение асептики и антисептики. Создано множество новых высокоактивных антисептических веществ и препаратов (антибиотики, сульфаниламиды, нитрофурановые соединения и др.), оказывающих менее вредное влияние на организм.

В целях обеспечения асептики в последние годы стал использоваться ряд физических факторов (радиоактивные излучения, ультрафиолетовые лучи, ультразвук и др.).

Выделяют два источника хирургической инфекции : экзогенный и эндогенный. Эндогенный источник находится в организме больного, экзогенный - в окружающей среде.

В предупреждении эндогенного инфицирования основная роль принадлежит антисептике, экзогенного инфицирования - асептике.

Экзогенная инфекция подразделяется на воздушную, капельную, контактную, имплантационную.

Источником воздушной инфекции являются микробные клетки, находящиеся в воздухе во взвешенном состоянии. Особенно насыщен микробами воздух городов, закрытых помещений, больниц.

Борьба с воздушной инфекцией - это прежде всего борьба с пылью. Основные мероприятия, направленные на уменьшение воздушной инфекции, сводятся к следующему:

1) устройство правильной вентиляции операционных и перевязочных (кондиционирование воздуха);

2) ограничение посещения операционных и сокращение передвижения по ним персонала и посетителей;

3) защита от статического электричества, способствующего рассеиванию пыли;

4) влажная уборка помещений;

5) регулярное проветривание и облучение помещения операционной ультрафиолетовыми лучами;

6) сокращение времени контакта с воздухом открытой раны.

Капельная инфекция - разновидность воздушной инфекции, когда источником инфицирования является воздух, загрязненный капельками слюны изо рта и дыхательных путей больного, персонала или мелкими каплями других инфицированных жидкостей. Капельная инфекция, как правило, наиболее опасна для больного.

Основные мероприятия, направленные на борьбу с капельной инфекцией,- запрещение разговоров в операционной, обязательное ношение марлевых масок, прикрывающих рот и нос персонала, а также своевременная текущая уборка операционных.

Контактная инфекция - инфицирование раны при соприкосновении с ней нестерильных инструментов, инфицированных рук, материалов и др.

Профилактика контактной инфекции заключается в стерилизации всех приборов, инструментов и материалов, соприкасающихся с раной (см. Стерилизация , в хирургии), и строгом соблюдении правил обработки рук хирурга (см. Обработка рук). Важное значение придается также оперированию в перчатках и выполнению большинства манипуляций с тканями при помощи инструментов, а не рук.

Имплантационная инфекция - инфекция, вносимая в рану шовным материалом, тампонами, дренажами, протезами и т. п.

Профилактика этой инфекции заключается в тщательной стерилизации шовного материала, дренажей, эндопротезов и т. д. и по возможности более редком использовании оставляемых в ране инородных тел (применение бестампонного метода лечения ран, рассасывающихся шовных материалов и т. п.).

Имплантационная инфекция часто может быть дремлющей (латентной) и проявить себя только через длительный период времени при ослаблении защитных сил организма.

Особое значение профилактика имплантационной инфекции приобретает при пересадке органов и тканей, так как при применении различных иммунодепрессорных веществ подавляются защитные силы организма, в результате чего обычно невирулентная сапрофитная микрофлора становится весьма опасной.

Метод асептики для уничтожения микроорганизмов и их спор требует применения физических факторов и химических веществ.

Из физических факторов наиболее часто используется действие высокой температуры, вызывающей денатурацию белков микробной клетки. Споры большинства микробов более устойчивы к действию высокой температуры.

Чувствительность микробов к температуре зависит от их вида, штамма и состояния микробной клетки (делящиеся и молодые бактерии более чувствительны). Важное значение имеет и среда, в которой находятся бактерии (белки, сахар уменьшают чувствительность, а щелочи и кислоты увеличивают ее). Холод задерживает размножение микробных клеток, не оказывая выраженного бактерицидного действия.

Выраженным бактерицидным действием обладают ультрафиолетовые лучи. От их действия погибают микробы в воздухе, на поверхности тканей, на коже живых объектов, на стенах и полу помещений и т. п.

В последнее время арсенал асептики пополнился гамма - лучами, источником которых обычно являются радиоактивные изотопы 60 Со и 137 Cs. Стерилизацию этими лучами проводят в специальных камерах при дозе 1,5-2 млн. р. Этим методом можно стерилизовать белье, шовный материал, системы для переливания крови и др.

Ультразвуковая стерилизация требует мощных генераторов ультразвука и практического значения пока не имеет.

Жидкие среды можно освобождать от микробов и спор, подвергая их фильтрации через бактериальные фильтры, однако они не задерживают фильтрующихся вирусов.

Химические вещества, применяемые для стерилизации, должны быть бактерицидными и не портить инструменты и материалы, с которыми они соприкасаются.

Кроме традиционных веществ, заимствованных из арсенала антисептики (йод, спирт, хлорамин и др.), для обеззараживания приборов, инструментов, материалов применяются и другие вещества (например, диацид).

В профилактике инфицирования ран большое значение имеют дополнительные мероприятия: обкладывание краев раны стерильными салфетками, поэтапная смена инструментов и белья, повторное мытье рук хирургов или смена перчаток после «грязных» этапов операции, закрывание раны салфетками при вынужденной остановке операции, а также наложение послеоперационной повязки.

В последнее время вместо повязок иногда для закрытия раны применяют пленкообразующие вещества (типа пластубола), которые обычно упаковываются в аэрозольные баллоны.

Для обеспечения мер асептики чрезвычайно большое значение имеют организационные мероприятия. Среди них наиболее важна правильная планировка хирургических отделений и операционных блоков (см. Операционная , Операционно-перевязочный блок), уменьшающая опасность воздушнокапельной и внутрибольничной инфекции. Для особо «чистых» операций (трансплантация органов и тканей) строят «сверхчистые» операционные и «сверхчистые» отделения, где достигается высокая степень изоляции больных от персонала, что становится возможным при использовании мониторных систем для наблюдения за больными (см. Мониторное наблюдение).

Важным мероприятием по обеспечению асептики является санация обслуживающего персонала. Исследования последних лет показывают, что нередко источником хирургической инфекции является медперсонал, в зеве и носоглотке которого часто находится антибиотикоустойчивая патогенная флора. В случаях, когда санация не дает результатов, приходится прибегать к трудоустройству стойких бациллоносителей вне хирургических отделений.

Библиография: Брейдо И. С. История антисептики и асептики в России, Л., 1956, библиогр.; Инфекция в хирургии, в кн.: 24-й конгр. Международн. о-ва хирургов, под ред. Б. В. Петровского, т. 1, с. 21, М., 1972; Машковский М. Д. Лекарственные средства, ч. 2, с. 436, М., 1972; Стручков В. И. Очерки по общей и неотложной хирургии, с. 77, М., 1959; U s ade 1 W. Die Aseptik und die Antiseptik in der Chirurgie, в кн.: Chirurgie, hrsg. v. M. Kirschner u. O.Nordmann, Bd 1, S. 393, B.- Wien, 1940.

В. И. Стручков, В. A. Сахаров.

Асептика, определение. Основной закон асептики. Основные способы стерилизации инструментов, перевязочного материала, белья. Контроль стерильности.

Асе́птика - комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану.

Асептика обладает несомненными преимуществами перед антисептикой в смысле результатов лечения, а также потому, что при асептическом способе лечения ран не бывает отравлений, которые возможны при применении некоторых антисептических средств.

Основное правило асептики заключается в том, чтобы все, что соприкасается с раной, было стерильно, т. е. надежно обеззаражено, свободно от жизнеспособных бактерий.

Стерилизация - это освобождение объектов внешней среды от различных микроорганизмов с помощью физических и химических способов (обеззараживание, обеспложивание). Технология стерилизации включает следующие этапы: дезинфекция, очистка материала, помещение его в контейнеры и стерилизаторы, собственно стерилизация, оценка ее эффективности и хранение стерильного материала. Различают стерилизацию паровую (водяным паром поддавлением), воздушную (горячим воздухом) и газовую (стерилизующим газом), химическую, лучевую (ионизирующим излучением, ультрафиолетовыми лучами).

Паровой метод:

для стерилизации перевязочного материала, белья, инструментов:

2,1 АТМ (температура пара - 132,9° С) - 20 минут. 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (многоразовые шприцы, стекло).

для стерилизации резиновых изделий: 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (каждые 5 мин. продувка).

Воздушный метод:

Для стерилизации стекла, инструментов Сухожаровой шкаф (темп. воздуха - 180° С) - 60 мин. Сухожаровой шкаф (температура воздуха - 160° С) - 150 мин.

Растворами химических соединений (инструменты, эндоскопы): 6% перекись водорода - 6 часов; лизоформин 3000 8% - 1 час;

сайдекс 2% - 10 час; глутаровый альдегид 2,5% - 6 часов.

Газовый метод (стоматологические, хирургические инструменты, иглы для рефлексотерапии и т.д.): окись этилена; формальдегид

Операционное белье и материал (салфетки, бинты, перчатки, шовный материал и др.) стерилизуются и хранятся в специальных коробках-барабанах (биксы Шиммельбуша). Крупные биксы бывают двух типов: без фильтра (с боковыми отверстиями, перекрывающимися металлической лентой-поясом с натяжным замком) и с фильтром (с отверстиями в дне и крышке коробки, перекрытыми текстильными фильтрами - мадеполам, фланель и др.).

К перевязочному материалу относятся салфетки, марлевые шарики, тампоны, турунды, биксы; к операционному белью - халаты, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы.

После подготовки перевязочный материал и операционное белье укладываются в биксы или в полотняные мешки. После стерилизации срокхранения перевязочного материал а и белья в биксах - 48 ч, в мешках - 24 ч (если они не вскрывались).

Неинфицированные инструменты моются проточной водой в течение 5 мин и замачиваются в теплых (до 50 °С) моющих растворах на 15-20 мин. Примерные составы моющих растворов: пергидроль 20 г, стиральный порошок 5 г, вода - 975 мл; 2,5% раствор перекиси водорода - 200 мл, стиральный порошок 5 г, вода - 775 мл. Инструменты моются в таком растворе ершиком и щетками, прополаскиваются теплой водой 5 мин и дистиллированной - 1 мин. Затем в суховоздушном стерилизаторе при температуре 85 °С высушиваются.

Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, помещаются в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем моются в этом же растворе щетками, ополаскиваются проточной водой и далее по изложенной методике для неинфицированных инструментов. Специальной обработке подвергаются инструменты, контактировавшие с анаэробной инфекцией (замочка на 1 ч в 6% растворе перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства, обмывание и кипячение в течение 90 мин, затем - по вышеизложенной методике.

Стерилизация шовного материала может быть проведена в заводских условиях гамма-излучением.

Ампулированные мотки кетгута, шелка, капрона и других нитей хранятся при комнатной температуре и используются при необходимости.

Льняные и хлопчатобумажные нити,лавсан, капрон стерилизуются в автоклаве. Шелк, капрон, лавсан, хлопок стерилизуют также по методу Кохера.

Кетгут стерилизуют после обезжиривания (замачивание в эфире на 24 ч) по методам Клаудиуса (с использованием раствора Люголя и 96% раствора спирта), Губарева (раствора Люголя), Ситковского (в 2% растворе йодида калия) и др.

Контроль за стерильностью медицинских изделий осуществляется бактериологическими лабораториями лечебно-профилактических учреждений и санэпидслужбы.

Классификация хирургического инструментария. Хранение инструментов. Подготовка инструментов к работе. Техника накрывания перевязочного стола в перевязочной. Контроль стерильности инструментов.

Хирургические инструменты можно разделить на инструменты общего назначения и специальные инструменты.

1. Для разъединения тканей : скальпели, ножи, ножницы, пилы, долота, остеотомы, кусачки и др. К режущим инструментам относятся также резекционные ножи, применяемые для разрезания плотных сухожильных тканей вблизи суставов, и ампутационные ножи.

2. Вспомогательные инструменты (расширяющие, фиксирующие и др.: пинцеты анатомические и хирургические; тупые и острые крючки; зонды; большие расширители раны (зеркала); корнцанги, зажимы Микулича и др.

3. Кровоостанавливающие : зажимы (типа Кохера, Бильрота, Холстеда, «Москит» и др.) и лигатурные иглы Дешана.

4. Инструменты для соединения тканей : иглодержатели разных систем с колющими и режущими иглами.

Используемые при манипуляциях хирургические инструменты должны быть стерильными.

Хирургические инструменты передают из рук в руки тупыми концами в сторону принимающего, чтобы режущие и колющие части не травмировали рук. При этом передающий должен держать инструмент за середину.

Большинство хирургических инструментов изготавливается из хромированной нержавеющей стали.