La revisión presenta cambios en los parámetros de laboratorio del líquido cefalorraquídeo en enfermedades graves importantes del sistema nervioso central.

MENINGITIS

La prueba del líquido cefalorraquídeo es el único método que puede diagnosticar rápidamente la meningitis. La ausencia de cambios inflamatorios en el líquido cefalorraquídeo siempre permite excluir el diagnóstico de meningitis. El diagnóstico etiológico de la meningitis se establece mediante métodos bacterioscópicos y bacteriológicos, estudios virológicos y serológicos.

La pleocitosis es el rasgo más característico de los cambios en el LCR. Según la cantidad de células, se distinguen la meningitis serosa y purulenta. Con meningitis serosa, la citosis es de 500 a 600 en 1 μl, con meningitis purulenta, más de 600 en 1 μl. El estudio debe realizarse a más tardar 1 hora después de recibirlo.

Según la estructura etiológica, el 80-90% de los casos confirmados bacteriológicamente son Neisseria meningitides, Streptococcus pneumoniae y Haemophilus. La bacterioscopia del LCR, debido a la morfología característica de meningococos y neumococos, da un resultado positivo en la primera punción lumbar 1,5 veces más a menudo que el crecimiento del cultivo.

El LCR con meningitis purulenta varía desde ligeramente turbio, como blanqueado con leche, hasta densamente verde, purulento, a veces xantocrómico. En la etapa inicial del desarrollo de la meningitis meningocócica, hay un aumento de la presión intracraneal, luego se observa una leve citosis neutrofílica en el líquido cefalorraquídeo y en el 24,7% de los pacientes el LCR es normal en las primeras horas de la enfermedad. Luego, en muchos pacientes, ya en el primer día de la enfermedad, la citosis alcanza 12.000-30.000 en 1 μl, predominan los neutrófilos. Un curso favorable de la enfermedad se acompaña de una disminución del número relativo de neutrófilos y un aumento de linfocitos. Los casos de meningitis purulenta que aparecen con un cuadro clínico típico y una citosis relativamente pequeña pueden explicarse probablemente por un bloqueo parcial del espacio subaracnoideo. Puede que no exista una correlación clara entre la gravedad de la pleocitosis y la gravedad de la enfermedad.

El contenido de proteínas en el LCR durante la meningitis purulenta suele aumentar a 0,6-10 g/l y disminuye a medida que se desinfecta el líquido cefalorraquídeo. La cantidad de proteínas y la citosis suelen ser paralelas, pero en algunos casos con citosis elevada el nivel de proteínas permanece normal. Un alto contenido de proteínas en el LCR es más común en formas graves con síndrome de ependimitis, y su presencia en altas concentraciones durante el período de recuperación indica una complicación intracraneal (bloqueo del tracto del líquido cefalorraquídeo, derrame dural, absceso cerebral). La combinación de una pleocitosis baja con un alto contenido de proteínas es un signo pronóstico especialmente desfavorable.

En la mayoría de los pacientes con meningitis purulenta, desde los primeros días de la enfermedad hay una disminución de los niveles de glucosa (por debajo de 3 mmol/l); en caso de muerte, el nivel de glucosa se encontraba en forma de trazas. En el 60% de los pacientes, el nivel de glucosa es inferior a 2,2 mmol/l y la relación entre el nivel de glucosa y la sangre en el 70% es inferior a 0,31. Un aumento en el nivel de glucosa es casi siempre un signo de pronóstico favorable.

En la meningitis tuberculosa, el examen bacterioscópico del LCR suele dar un resultado negativo. Las micobacterias se encuentran con mayor frecuencia en casos recientes de la enfermedad (en el 80% de los pacientes con meningitis tuberculosa). La ausencia de micobacterias en los puntos lumbares a menudo se observa cuando se detectan en el LCR cisternal. En caso de examen bacterioscópico negativo o dudoso, la tuberculosis se diagnostica mediante cultivo o prueba biológica. En la meningitis tuberculosa, el LCR es transparente, incoloro o ligeramente opalescente. La pleocitosis varía de 50 a 3000 en 1 μl, según la etapa de la enfermedad, y entre 100 y 300 en 1 μl entre el día 5 y 7 de la enfermedad. En ausencia de tratamiento etiotrópico, el número de células aumenta desde el principio hasta el final de la enfermedad. Puede haber una caída repentina de la citosis con una nueva punción lumbar realizada 24 horas después de la primera. Las células son predominantemente linfocitos, pero al inicio de la enfermedad a menudo se produce una pleocitosis mixta linfocítica-neutrófila, que se considera típica de la tuberculosis miliar con siembra de las meninges. La característica de la meningitis tuberculosa es la diversidad de la composición celular, cuando, junto con el predominio de los linfocitos, hay neutrófilos, monocitos, macrófagos y linfocitos gigantes. Posteriormente, la pleocitosis adquiere un carácter linfoplasmocítico o fagocítico. Una gran cantidad de monocitos y macrófagos indica un curso desfavorable de la enfermedad.

La proteína total en la meningitis tuberculosa siempre aumenta a 2-3 g/l, y los investigadores anteriores observaron que la proteína aumenta antes del inicio de la pleocitosis y desaparece después de su disminución significativa, es decir, en los primeros días de la enfermedad, se produce la disociación proteína-célula. lugar. Las formas atípicas modernas de meningitis tuberculosa se caracterizan por la ausencia de la típica disociación proteína-célula.

En la meningitis tuberculosa, se observa una disminución temprana de la concentración de glucosa a 0,83-1,67 mmol/ly menos. En algunos pacientes se detecta una disminución de los niveles de cloruro. En la meningitis viral, aproximadamente 2/3 de los casos son causados ​​por el virus de las paperas y un grupo de enterovirus.

En la meningitis serosa de etiología viral, el LCR es transparente o ligeramente opalescente. La pleocitosis es pequeña (raramente hasta 1000) con predominio de linfocitos. En algunos pacientes, los neutrófilos pueden predominar al inicio de la enfermedad, lo que es típico de un curso más grave y un pronóstico menos favorable. La proteína total está entre 0,6 y 1,6 g/l o lo normal. En algunos pacientes, se detecta una disminución en la concentración de proteínas debido a la sobreproducción de líquido cefalorraquídeo.

LESIÓN CEREBRAL CRANEO CERRADA

La permeabilidad de los vasos cerebrales en el período agudo de una lesión cerebral traumática es varias veces mayor que la permeabilidad de los vasos periféricos y depende directamente de la gravedad de la lesión. Para determinar la gravedad de la lesión en el período agudo, se pueden utilizar varias pruebas licorológicas y hematológicas. Estos incluyen: la gravedad y duración de la presencia de hiperproteinoraquia como prueba que caracteriza la profundidad de los trastornos disgémicos en el cerebro y la permeabilidad de la barrera hematoencefálica; la presencia y gravedad de la eritroarquia como prueba que caracteriza de forma fiable el sangrado intracerebral en curso; la presencia de pleocitosis neutrofílica pronunciada dentro de los 9 a 12 días posteriores a la lesión, lo que indica la falta de respuesta de los tejidos que limitan los espacios del líquido cefalorraquídeo y la inhibición de las propiedades higienizantes de las células aracnoideas o la aparición de una infección.

Conmoción cerebral: el LCR suele ser incoloro, transparente y contiene pocos o ningún glóbulo rojo. En los días 1-2 después de la lesión, la citosis es normal, en los días 3-4 aparece una pleocitosis moderadamente pronunciada (hasta 100 en 1 μl), que disminuye a cifras normales en los días 5-7. En el licorograma, los linfocitos con la presencia de una pequeña cantidad de neutrófilos y monocitos, los macrófagos, por regla general, están ausentes. El nivel de proteína en los días 1-2 después de la lesión es normal, en los días 3-4 aumenta a 0,36-0,8 g/l y vuelve a la normalidad en los días 5-7.

Contusión cerebral: el número de glóbulos rojos varía de 100 a 35 000 y en caso de hemorragia subaracnoidea masiva alcanza de 1 a 3 millones, dependiendo de esto el color del LCR puede variar de grisáceo a rojo. Debido a la irritación de las meninges se desarrolla pleocitosis reactiva. Para hematomas de gravedad leve y moderada, la pleocitosis en los días 1-2 es en promedio 160 en 1 μl, y en casos graves alcanza varios miles. En los días 5 a 10, la pleocitosis disminuye significativamente, pero no alcanza la normalidad en los siguientes 11 a 20 días. En el líquido cefalorraquídeo hay linfocitos, a menudo macrófagos con hemosiderina. Si la naturaleza de la pleocitosis cambia a neutrofílica (70-100% de neutrófilos), se desarrolla una meningitis purulenta como complicación. El contenido de proteínas en los casos leves a moderados es de media de 1 g/l y no vuelve a la normalidad al cabo de 11 a 20 días. En caso de daño cerebral grave, los niveles de proteínas pueden alcanzar entre 3 y 10 g/l (a menudo mortal).

En caso de lesión cerebral traumática, el metabolismo energético del cerebro cambia al camino de la glucólisis anaeróbica, lo que conduce a la acumulación de ácido láctico en él y, en última instancia, a la acidosis cerebral.

El estudio de los parámetros que reflejan el estado del metabolismo energético del cerebro permite juzgar la gravedad del proceso patológico. Una disminución de la diferencia arteriovenosa de pO2 y pCO2, un aumento del consumo de glucosa por parte del cerebro, un aumento de la diferencia venoarterial de ácido láctico y un aumento del mismo en el líquido cefalorraquídeo. Los cambios observados son el resultado de la alteración de la actividad de varios sistemas enzimáticos y no pueden compensarse con el suministro de sangre. Es necesario estimular la actividad nerviosa de los pacientes.

ATAQUE HEMORRAGICO

El color del líquido cefalorraquídeo depende de la mezcla de sangre. En el 80-95% de los pacientes, durante las primeras 24-36 horas, el LCR contiene una mezcla evidente de sangre y posteriormente es sanguinolento o xantocrómico. Sin embargo, en el 20-25% de los pacientes con pequeñas lesiones ubicadas en las partes profundas de los hemisferios, o en el caso de bloqueo de las vías del líquido cefalorraquídeo debido a un edema cerebral que se desarrolla rápidamente, no se detectan glóbulos rojos en el LCR. Además, los glóbulos rojos pueden estar ausentes durante la punción lumbar en las primeras horas después del inicio de la hemorragia, mientras la sangre llega al nivel de la columna. Estas situaciones son motivo de errores de diagnóstico: el diagnóstico de "ictus isquémico". La mayor cantidad de sangre se encuentra cuando la sangre ingresa al sistema ventricular. La extracción de sangre del tracto del líquido cefalorraquídeo comienza desde el primer día de la enfermedad y continúa durante 14 a 20 días en caso de lesión cerebral traumática y accidente cerebrovascular, y en caso de aneurismas cerebrales hasta 1 a 1,5 meses y no depende. de la masividad de la hemorragia, sino del proceso etiológico.

El segundo signo importante de cambios en el LCR en el accidente cerebrovascular hemorrágico es la xantocromía, que se detecta en el 70-75% de los pacientes. Aparece el segundo día y desaparece 2 semanas después del ictus. Con una gran cantidad de glóbulos rojos, la xantocromía puede aparecer en un plazo de 2 a 7 horas.

Se observa un aumento de la concentración de proteínas en el 93,9% de los pacientes y su cantidad oscila entre 0,34 y 10 g/l y más. La hiperproteinoraquia y el aumento de los niveles de bilirrubina pueden persistir durante mucho tiempo y, junto con los trastornos licorodinámicos, pueden causar síntomas meníngeos, en particular dolores de cabeza, incluso entre 0,5 y 1 año después de la hemorragia subaracnoidea.

La pleocitosis se detecta en casi 2/3 de los pacientes, aumenta en 4 a 6 días y el número de células varía de 13 a 3000 en 1 μl. La pleocitosis se asocia no solo con la penetración de la sangre en las vías del líquido cefalorraquídeo, sino también con la reacción de las meninges a la sangre derramada. En tales casos parece importante determinar la verdadera citosis del líquido cefalorraquídeo. A veces, con hemorragias en el cerebro, la citosis permanece normal, lo que se asocia con hematomas limitados sin penetración en el espacio del líquido cefalorraquídeo o con falta de respuesta de las meninges.

En las hemorragias subaracnoideas, la mezcla de sangre puede ser tan grande que el líquido cefalorraquídeo es visualmente casi indistinguible de la sangre pura. El primer día, el número de glóbulos rojos, por regla general, no supera los 200-500 x 109/l, posteriormente su número aumenta a 700-2000 x 109/l. En las primeras horas después del desarrollo de hemorragias subaracnoideas de pequeño volumen, la punción lumbar puede producir líquido cefalorraquídeo claro, pero al final del primer día aparece una mezcla de sangre. Las razones de la ausencia de sangre en el LCR pueden ser las mismas que las de un accidente cerebrovascular hemorrágico. La pleocitosis, principalmente neutrofílica, superior a 400-800x109/l, es reemplazada por linfocítica al quinto día. Pocas horas después de la hemorragia, pueden aparecer macrófagos, que pueden considerarse marcadores de hemorragia subaracnoidea. Un aumento de las proteínas totales suele corresponder al grado de hemorragia y puede alcanzar entre 7 y 11 g/ly más.

ACV ISQUÉMICO

El LCR es incoloro y transparente, en el 66% la citosis se mantiene dentro del rango normal, en el resto aumenta a 15-50x109/l, en estos casos se detectan infartos cerebrales característicos, ubicados cerca de las vías del líquido cefalorraquídeo. La pleocitosis, predominantemente linfoide-neutrófila, es causada por cambios reactivos alrededor de focos isquémicos extensos. En la mitad de los pacientes el contenido de proteínas se determina en el rango de 0,34-0,82 g/l, con menos frecuencia hasta 1 g/l. El aumento de la concentración de proteínas se debe a la necrosis del tejido cerebral y al aumento de la permeabilidad de la barrera hematoencefálica. El contenido de proteínas puede aumentar al final de la primera semana después de un derrame cerebral y durar más de 1,5 meses. Muy característico del accidente cerebrovascular isquémico es la disociación proteína-célula (aumento del contenido de proteínas con citosis normal) o célula-proteína.

ABSCESO CEREBRAL

La fase inicial de formación de abscesos se caracteriza por pleocitosis neutrofílica y un ligero aumento de proteínas. A medida que se desarrolla la cápsula, la pleocitosis disminuye y su carácter neutrofílico es reemplazado por linfoide, y cuanto mayor es el desarrollo de la cápsula, menos pronunciada es la pleocitosis. En este contexto, la aparición repentina de pleocitosis neutrofílica pronunciada indica un avance del absceso. Si el absceso se encuentra cerca del sistema ventricular o de la superficie del cerebro, la citosis será de 100 a 400 en 3 μl. Puede ocurrir pleocitosis menor o citosis normal cuando el absceso está delimitado del tejido cerebral circundante por una cápsula densa, fibrosa o hialinizada. La zona de infiltración inflamatoria alrededor del absceso en este caso está ausente o es débilmente expresada.

TUMORES DEL SNC

Junto con la disociación proteína-célula, que se considera característica de los tumores, puede ocurrir pleocitosis con un contenido normal de proteínas en el líquido cefalorraquídeo. En los gliomas de los hemisferios cerebrales, independientemente de su histología y ubicación, se observa un aumento de proteínas en el líquido cefalorraquídeo en el 70,3% de los casos y en las formas inmaduras, en el 88%. Una composición normal o incluso hidrocefálica del líquido ventricular y espinal puede ocurrir tanto en gliomas profundamente arraigados como en gliomas que crecen hacia los ventrículos. Esto se observa principalmente en tumores maduros de crecimiento difuso (astrocitomas, oligodendrogliomas), sin focos evidentes de necrosis y formación de quistes y sin desplazamiento macroscópico del sistema ventricular. Al mismo tiempo, los mismos tumores, pero con un gran desplazamiento de los ventrículos, suelen ir acompañados de un aumento en la cantidad de proteínas en el líquido cefalorraquídeo. La hiperproteinoraquia (a partir de 1 g/ly más) se observa en tumores situados en la base del cerebro. En los tumores hipofisarios, el contenido de proteínas oscila entre 0,33 y 2,0 g/l. El grado de cambio en el proteinograma depende directamente de la naturaleza histológica del tumor: cuanto más maligno es el tumor, más graves son los cambios en la fórmula proteica del líquido cefalorraquídeo. Aparecen lipoproteínas beta que normalmente no se detectan y el contenido de lipoproteínas alfa disminuye.

En pacientes con tumores cerebrales, independientemente de su naturaleza histológica y ubicación, se produce con bastante frecuencia pleocitosis polimórfica. La reacción celular está determinada por las peculiaridades de los procesos biológicos que ocurren en el tumor en determinadas etapas de su desarrollo (necrosis, hemorragia), que determinan la reacción. El tejido cerebral y las membranas que rodean el tumor. Las células tumorales de los hemisferios cerebrales en el líquido de los ventrículos se pueden detectar en el 34,4% y en el líquido cefalorraquídeo, del 5,8 al 15% de todas las observaciones. El principal factor que determina la entrada de células tumorales en el líquido cefalorraquídeo es la naturaleza de la estructura del tejido tumoral (estroma conectivo deficiente), la ausencia de una cápsula y la ubicación del tumor cerca de los espacios del líquido cefalorraquídeo.

ENFERMEDADES INFLAMATORIAS CRÓNICAS (aracnoiditis, aracnoencefalitis, encefalitis periventricular)

Licor (líquido cefalorraquídeo o cefalorraquídeo, LCR) – fluido biológico necesario para el funcionamiento del sistema nervioso central. Su investigación es uno de los tipos más importantes de investigación de laboratorio. Consta de una etapa preanalítica (preparación del tema, recogida del material y su entrega al laboratorio), analítica (la implementación real del estudio) y postanalítica (decodificación del resultado obtenido). Sólo la correcta ejecución de todas las manipulaciones en cada una de estas etapas determina la calidad del análisis.

El líquido cefalorraquídeo (LCR) se forma en los plexos coroideos de los ventrículos del cerebro. En un adulto, en los espacios subaracnoideos y en los ventrículos del cerebro circulan simultáneamente entre 110 y 160 ml de líquido cefalorraquídeo, y en el canal espinal, entre 50 y 70 ml. El LCR se forma continuamente a una velocidad de 0,2 a 0,8 ml/min, lo que depende de la presión intracraneal. Una persona sana produce entre 350 y 1150 ml de líquido cefalorraquídeo al día.

El licor se obtiene mediante punción del canal espinal, más a menudo lumbar, según una técnica bien conocida por neurólogos y neurocirujanos. Se eliminan las primeras gotas (sangre de "viaje"). Luego, el líquido cefalorraquídeo se recoge en al menos 2 tubos: en un tubo normal (químico, centrífugo) para análisis clínico y químico general y en uno estéril para examen bacteriológico. En el formulario de derivación para un estudio de LCR, el médico debe indicar no sólo el nombre del paciente, sino también el diagnóstico clínico y el propósito del estudio.

Cabe recordar que las muestras de líquido cefalorraquídeo entregadas al laboratorio deben protegerse del sobrecalentamiento o enfriamiento, y las muestras destinadas a la detección de polisacáridos bacterianos en pruebas serológicas deben calentarse en un baño de agua durante 3 minutos.

El estudio de laboratorio real del líquido cefalorraquídeo (etapa analítica) se lleva a cabo de acuerdo con todas las reglas aceptadas en el diagnóstico de laboratorio clínico al analizar cualquier fluido biológico e incluye las siguientes etapas:

Análisis macroscópico: evaluación de propiedades físicas y químicas (volumen, color, carácter),
- contar el número de células,
- microscopía de la muestra nativa y examen citológico de la muestra teñida;
- investigación bioquímica,
- examen microbiológico (si está indicado).

Consideramos apropiado e informativo en algunos casos complementar el estudio del LCR con pruebas inmunológicas y, posiblemente, de otro tipo, cuya importancia se analiza en la literatura especializada.

Decodificación de indicadores del líquido cefalorraquídeo.

El LCR normal es incoloro y transparente (como el agua destilada, en comparación con la cual se suelen describir las propiedades físicas del líquido cefalorraquídeo).

El color grisáceo o gris verdoso del líquido cefalorraquídeo suele deberse a la mezcla de microbios y leucocitos. El color rojo del LCR de intensidad variable (eritrocromía) se debe a la mezcla de glóbulos rojos que se encuentran en hemorragias recientes o lesiones cerebrales. Visualmente, la presencia de glóbulos rojos se detecta cuando su contenido es superior a 500-600 por μl.

En procesos patológicos, el líquido puede ser xantocrómico, es decir, de color amarillo o marrón amarillento debido a los productos de descomposición de la hemoglobina. También es necesario recordar acerca de la falsa xantocromía, la coloración del líquido cefalorraquídeo causada por los medicamentos. Con menos frecuencia, vemos un color verdoso en el LCR (meningitis purulenta, absceso cerebral). La literatura también describe un color crujiente del líquido cefalorraquídeo, cuando un quiste de craneofaringioma penetra en el tracto del líquido cefalorraquídeo.

La turbidez del líquido cefalorraquídeo puede deberse a la mezcla de células sanguíneas o microorganismos. En este último caso, la turbidez se puede eliminar mediante centrifugación. Cuando el LCR contiene una mayor cantidad de proteínas gruesas, se vuelve opalescente.

La densidad relativa del líquido cefalorraquídeo obtenido mediante punción lumbar es de 1,006 a 1,007. En caso de inflamación de las meninges y lesiones cerebrales, la densidad relativa del líquido cefalorraquídeo aumenta a 1,015. Disminuye con la sobreproducción de líquido cefalorraquídeo (hidrocefalia).

Con un mayor contenido de fibrinógeno en el líquido cefalorraquídeo, se forma una película o coágulo fibrinoso, que se observa con mayor frecuencia en la meningitis tuberculosa. A veces, un tubo de ensayo con líquido se deja a temperatura ambiente durante un día (¿si es necesario determinar con precisión si se ha formado una película?). Si hay una película fibrinosa, se transfiere con una aguja de disección a un portaobjetos de vidrio y se tiñe con Ziehl-Neelsen u otro método para identificar micobacterias. El LCR normal tiene un 98-99% de agua.

Sin embargo, el estudio de su composición química es una tarea importante. Incluye la determinación del nivel de proteínas, glucosa y cloruros y, en algunos casos, se complementa con otros indicadores.

Proteína en licor

Más del 80% de las proteínas del LCR provienen del plasma mediante ultrafiltración. El contenido de proteínas es normal en diferentes porciones: en la parte ventricular – 0,05-0,15 g/l, en la cisternal 0,15-0,25 g/l, en la lumbar 0,15-0,35 g/l. Para determinar la concentración de proteínas en el líquido cefalorraquídeo se puede utilizar cualquiera de los métodos estandarizados (con ácido sulfosalicílico y sulfato de amonio, entre otros). Un aumento del contenido de proteínas en el líquido cefalorraquídeo (hiperproteinarquía) puede deberse a diversos factores patogénicos (Tabla 1).

El estudio de las proteínas del líquido cefalorraquídeo permite no solo aclarar la naturaleza del proceso patológico, sino también evaluar el estado de la barrera hematoencefálica. La albúmina puede servir como indicador para estos fines, siempre que su nivel en el líquido cefalorraquídeo se determine mediante métodos inmunoquímicos. La determinación de albúmina se lleva a cabo debido a que, al ser una proteína sanguínea, no se sintetiza localmente y, por lo tanto, puede ser un "marcador" de inmunoglobulinas que han penetrado desde el torrente sanguíneo debido a una alteración de la permeabilidad de las barreras. La determinación simultánea de albúmina en suero sanguíneo (plasma) y LCR permite calcular el índice de albúmina:

Con una barrera hematoencefálica intacta, este índice es inferior a 9, con daño moderado - 9-14, con daño notable - 14-30, con daño severo - 30-100, y un aumento de más de 100 indica daño completo a la barrera.

En los últimos años, ha habido un interés creciente en las proteínas del líquido cefalorraquídeo específicas del SNC: enolasa específica de neuronas, proteína S-100, proteína básica de mielina (MBP) y algunas otras. MBP parece ser uno de los más prometedores para fines clínicos. Está prácticamente ausente en el líquido cefalorraquídeo normal (su concentración no supera los 4 mg/l) y aparece sólo en condiciones patológicas. Este signo de laboratorio no es específico de determinadas formas nosológicas, pero refleja el tamaño de la lesión (asociada principalmente a la destrucción de la sustancia blanca). Algunos autores consideran que la determinación de la PAM en el líquido cefalorraquídeo es prometedora para controlar la neurovelocidad. Desafortunadamente, hoy en día todavía existen problemas asociados con la determinación directa de la concentración de esta proteína.

Glucosa en líquido cefalorraquídeo

La glucosa se encuentra en el líquido cefalorraquídeo normal en una concentración de 2,00 a 4,18 mmol/l. Este valor está sujeto a fluctuaciones significativas incluso en una persona sana, dependiendo de la dieta, la actividad física y otros factores. Para evaluar correctamente el nivel de glucosa en el líquido cefalorraquídeo, se recomienda determinar simultáneamente su nivel en la sangre, donde normalmente es 2 veces mayor. Los niveles elevados de glucosa en sangre (hiperglucoarquia) ocurren en diabetes mellitus, encefalitis aguda, trastornos circulatorios isquémicos y otras enfermedades. La hipoglucoarquia se observa con meningitis de diversas etiologías o inflamación aséptica, daño tumoral al cerebro y las membranas, con menos frecuencia con infección por herpes, hemorragia subaracnoidea.

El lactato (ácido láctico) tiene cierta ventaja sobre la glucosa como marcador de diagnóstico, ya que su concentración en el líquido cefalorraquídeo (1,2-2,1 mmol/l) no depende de la de la sangre. Su nivel aumenta significativamente en diversas afecciones asociadas con trastornos del metabolismo energético: meningitis, especialmente las causadas por la flora grampositiva, hipoxia cerebral y algunas otras.

Cloruros en líquido cefalorraquídeo

Cloruros - contenido en líquido cefalorraquídeo normal - 118-132 mmol/l. Se observa un aumento de la concentración en el LCR cuando se altera su eliminación del organismo (enfermedad renal, enfermedad cardíaca), en enfermedades degenerativas y tumores del sistema nervioso central. Se observa una disminución del contenido de cloruro en encefalitis y meningitis.

Enzimas en licor

El licor se caracteriza por la baja actividad de las enzimas que contiene. Los cambios en la actividad de las enzimas en el líquido cefalorraquídeo en diversas enfermedades son principalmente inespecíficos y paralelos a los cambios descritos en la sangre en estas enfermedades (Tabla 2). La interpretación de los cambios en la actividad de la creatina fosfoquinasa (CPK) merece un enfoque diferente. Esta enzima se presenta en los tejidos en tres fracciones, caracterizadas no solo por diferencias moleculares, sino también por la naturaleza de su distribución en los tejidos: CPK-MB (miocardio), CPK-MM (músculos), CPK-BB (cerebro). Si la actividad total de CPK en el líquido cefalorraquídeo no tiene un valor diagnóstico fundamental (puede aumentar en tumores, infarto cerebral, epilepsia y otras enfermedades), entonces la fracción CPK-BB es un marcador bastante específico de daño al tejido cerebral y su La actividad en el LCR se correlaciona con la escala de Glasgow.

Recuento celular y citograma del líquido cefalorraquídeo.

Al estudiar fluidos biológicos, incluido el LCR, generalmente se cuenta el número de células y el citograma en frotis teñidos con asureosina (según Romanovsky-Giemsa, Nocht, Pappenheim). El recuento de elementos celulares en el líquido cefalorraquídeo (determinación de citosis) se realiza mediante cámara de Fuchs-Rosenthal, previa dilución 10 veces con reactivo de Samson. Usando este tinte en particular, y ningún otro. le permite teñir las células en 15 minutos y mantenerlas sin cambios hasta por 2 horas.

El número de células en toda la cámara se divide por 3, por lo que se obtiene una citosis de 1 μl. Para mayor precisión, la citosis se cuenta en tres cámaras. En ausencia de una cámara de Fuchs-Rosenthal, se puede utilizar la cámara de Goryaev, contando las células en toda la cuadrícula también en tres cámaras, el resultado se multiplica por 0,4. Todavía existen discrepancias en las unidades de medida de la citosis: el número de células en la cámara, en 1 µl o 1 litro. Probablemente sea aconsejable expresar la citosis por el número de células por µl. También se pueden utilizar sistemas automatizados para contar la cantidad de glóbulos blancos y rojos en el LCR.

Un aumento del contenido de células en el LCR (pleocitosis) aparece más a menudo en las enfermedades inflamatorias y, en menor medida, en la irritación de las meninges. La pleocitosis más pronunciada se observa en infecciones bacterianas, lesiones cerebrales fúngicas y meningitis tuberculosa. En epilepsia, aracnoiditis, hidrocefalia, procesos degenerativos y algunas otras enfermedades del sistema nervioso central, la citosis sigue siendo normal.

La tinción de las células de la preparación nativa con el reactivo de Samson permite diferenciar las células de forma bastante fiable. Pero sus características morfológicas más precisas se logran después de la fijación y tinción de preparaciones citológicas preparadas. El enfoque moderno para la preparación de tales medicamentos implica el uso de una citocentrífuga. Sin embargo, incluso en EE.UU. sólo el 55% de los laboratorios están equipados con ellos. Por lo tanto, en la práctica se utiliza un método más sencillo: la deposición de células en un portaobjetos de vidrio. Las preparaciones deben secarse bien al aire y luego pintarse.

Los elementos celulares se cuentan en la preparación teñida. Están representados predominantemente por células sanguíneas (más a menudo, linfocitos y neutrófilos, con menos frecuencia, monocitos, eosinófilos, basófilos), plasma y mastocitos, macrófagos, bolas granulares (formas degenerativas de un tipo especial de macrófagos, lipófagos en estado graso). degeneración), se pueden encontrar células aracnoendoteliales, epindimas. La morfología de todos estos elementos celulares suele ser bien conocida por los diagnosticadores de laboratorio y se describe en detalle en muchos manuales. El nivel de pleocitosis y la naturaleza del citograma del líquido cefalorraquídeo permiten aclarar la naturaleza del proceso patológico (Tabla 3).

La leucocitosis neutrofílica suele acompañar a la infección aguda (meningitis local y difusa). La eosinofilia en el LCR se observa con bastante poca frecuencia: con equinococosis del cerebro, meningitis eosinofílica. La eosinofilia en el LCR no suele correlacionarse con el número de eosinófilos en la sangre. La pleocitosis linfocítica en el líquido cefalorraquídeo ocurre en la meningitis viral, la esclerosis múltiple, en la fase crónica de la meningitis tuberculosa, después de operaciones en las meninges. En los procesos patológicos del sistema nervioso central se observa polimorfismo de los linfocitos, entre los que se encuentran los activados. Se caracterizan por la presencia de abundante citoplasma pálido con gránulos azurófilos únicos; algunas células presentan cordones o fragmentación del citoplasma (clasmatosis). Las células plasmáticas aparecen en el citograma durante la meningitis viral o bacteriana, procesos inflamatorios leves y durante el período de recuperación de la neurosífilis. Los monocitos, que se degeneran en el líquido cefalorraquídeo más rápidamente que los linfocitos, se observan en la esclerosis múltiple, la panencefalitis progresiva y los procesos inflamatorios crónicos lentos. Los macrófagos son los "ordenanzas" del líquido cefalorraquídeo; aparecen durante hemorragias, infecciones, necrosis traumática e isquémica.

A veces, en el LCR se encuentran células atípicas, elementos que, debido a sus características morfológicas, no pueden clasificarse como formas celulares específicas. Las células atípicas se encuentran en procesos inflamatorios crónicos (meningitis tuberculosa, esclerosis múltiple, etc.), y suelen ser células tumorales. La probabilidad de encontrar células tumorales en el líquido cefalorraquídeo de los tumores cerebrales es baja (no más del 1,5%). La detección de células blásticas en el LCR en la hemoblastosis sugiere neuroleucemia.

Al analizar la composición del líquido cefalorraquídeo, es importante evaluar la proporción de proteínas y elementos celulares (disociación). Con la disociación célula-proteína, se observa pleocitosis pronunciada con un contenido de proteína normal o ligeramente aumentado. Esto es típico de la meningitis. La disociación de las células proteicas se caracteriza por hiperproteinarquía con citosis normal. Esta condición es típica de procesos estancados en el tracto del líquido cefalorraquídeo (tumor, aracnoiditis, etc.).

Las situaciones clínicas a veces requieren contar el número de glóbulos rojos en el líquido cefalorraquídeo con sangre (para objetivar el volumen de la hemorragia). Los glóbulos rojos se cuentan de la misma forma que en la sangre. Como se indicó anteriormente, el color del líquido cefalorraquídeo cambia si 1 μl contiene más de 500 a 600 glóbulos rojos, se produce una tinción notable cuando hay alrededor de 2000 y se vuelve hemorrágico cuando el nivel de glóbulos rojos es superior a 4000/μl. .

Examen microbiológico del líquido cefalorraquídeo.

Una de las enfermedades comunes del sistema nervioso central es la meningitis purulenta. En tales casos, la investigación micorobiológica adquiere especial relevancia. Incluye una prueba indicativa: bacterioscopia de preparaciones y técnicas culturales clásicas. La bacterioscopia del LCR tiene un valor diagnóstico limitado, especialmente cuando se obtiene un LCR claro. Un frotis preparado a partir del sedimento de líquido cefalorraquídeo obtenido por centrifugación se tiñe con azul de metileno o tinción de Gram, aunque algunos autores creen que esta última opción de tinción “daña” los elementos formados y crea artefactos. En meningitis y abscesos, se encuentra una flora diversa, correspondiente a la naturaleza de la enfermedad. Independientemente de los resultados de la microscopía, el diagnóstico de meningitis bacteriana debe confirmarse mediante cultivo, que resulta decisivo en el diagnóstico de este grupo de enfermedades y en la elección del tratamiento adecuado. Se lleva a cabo de conformidad con la Orden No. 375 del Ministerio de Salud de la Federación de Rusia de 23 de diciembre de 1998 "Sobre medidas para fortalecer la vigilancia epidemiológica y la prevención de la infección meningocócica y la meningitis bacteriana purulenta". La causa más común de meningitis bacteriana es el diplococo gramnegativo Neisseria meningitidis, que en el 80% de los casos puede detectarse mediante bacterioscopia.

microscopía del LCR

Normalmente, en el líquido cefalorraquídeo sólo hay linfocitos y monocitos. En diversas enfermedades y condiciones patológicas, pueden aparecer otros tipos de células en el líquido cefalorraquídeo.

Los linfocitos son similares en tamaño a los eritrocitos. Los linfocitos tienen un núcleo grande y un borde de citoplasma estrecho y sin teñir. Normalmente, el líquido cefalorraquídeo contiene entre 8 y 10 células de linfocitos. Su número aumenta con los tumores del sistema nervioso central. Los linfocitos se encuentran en procesos inflamatorios crónicos en las membranas (meningitis tuberculosa, cisticercosis, aracnoiditis).

Células plasmáticas en el líquido cefalorraquídeo. Las células son más grandes que los linfocitos, el núcleo es grande, está ubicado excéntricamente, una gran cantidad de citoplasma con un tamaño de núcleo relativamente pequeño (el tamaño de la célula es de 6 a 12 micrones). Las células plasmáticas en el líquido cefalorraquídeo se encuentran solo en casos patológicos con procesos inflamatorios prolongados en el cerebro y las membranas, con encefalitis, meningitis tuberculosa, cisticercosis, aracnoiditis y otras enfermedades, en el período postoperatorio, con una cicatrización lenta de las heridas.

Monocitos tisulares en el líquido cefalorraquídeo. El tamaño de las células es de 7 a 10 micrones. En líquidos normales, a veces pueden presentarse como ejemplares únicos. Los monocitos se encuentran en el líquido cefalorraquídeo después de una cirugía en el sistema nervioso central, durante procesos inflamatorios prolongados en las membranas. La presencia de monocitos tisulares indica una reacción tisular activa y una cicatrización normal de la herida.

Macrófagos en el líquido cefalorraquídeo. Pueden tener núcleos de diversas formas; más a menudo el núcleo está ubicado en la periferia de la célula, el citoplasma contiene inclusiones y vacuolas. Los macrófagos no se encuentran en el líquido cefalorraquídeo normal. La presencia de macrófagos con un número normal de células en el líquido cefalorraquídeo se observa después de una hemorragia o durante un proceso inflamatorio. Como regla general, ocurren en el período postoperatorio, lo que tiene importancia pronóstica e indica una limpieza activa del líquido cefalorraquídeo.

Bolas granuladas en el licor. Las células con infiltración grasa son macrófagos con presencia de gotitas de grasa en el citoplasma. En las preparaciones teñidas de líquido cefalorraquídeo, las células tienen un núcleo pequeño ubicado periféricamente y un citoplasma de células grandes. El tamaño de las células varía y depende de las gotas de grasa incluidas. Las bolas granulares se encuentran en el líquido patológico obtenido de quistes cerebrales en áreas de descomposición del tejido cerebral y en tumores.

Neutrófilos en el líquido cefalorraquídeo. Las células de la cámara son idénticas en apariencia a los neutrófilos de la sangre periférica. La presencia de neutrófilos en el líquido cefalorraquídeo, incluso en cantidades mínimas, indica una reacción inflamatoria anterior o existente. La presencia de neutrófilos alterados indica la atenuación del proceso inflamatorio.

Eosinófilos en el líquido cefalorraquídeo. Se determina en el líquido cefalorraquídeo por la granularidad uniforme y brillante existente. Los eosinófilos se encuentran en hemorragias subaracnoideas, meningitis, tumores cerebrales tuberculosos y sifilíticos.

Células epiteliales en el líquido cefalorraquídeo. Las células epiteliales que limitan el espacio subaracnoideo son bastante raras en el líquido cefalorraquídeo. Son células grandes y redondas con núcleos pequeños, redondos u ovalados. Se encuentran durante las neoplasias, a veces durante los procesos inflamatorios.

Células y complejos similares a tumores en el líquido cefalorraquídeo. Se encuentran en la cámara y en la preparación del licor coloreado. Las células malignas pueden pertenecer a los siguientes tipos de tumores:

• meduloblastoma;
• espongioblastoma;
• astrocitoma;

Cristales en el licor. Rara vez se encuentra en el líquido cefalorraquídeo, en caso de desintegración del tumor.

Los elementos de Echinococcus en el líquido cefalorraquídeo (ganchos, escólex, fragmentos de la membrana quitinosa) rara vez se encuentran en el líquido cefalorraquídeo.

Diagnóstico por PCR del líquido cefalorraquídeo.

En los últimos años, ciertas perspectivas en el diagnóstico etiológico de las neuroinfecciones se han asociado con el desarrollo de tecnologías de genética molecular para la detección de ácidos nucleicos de patógenos de enfermedades infecciosas en el líquido cefalorraquídeo (diagnóstico por PCR).

Por tanto, el líquido cefalorraquídeo es un medio que responde claramente a procesos patológicos en el sistema nervioso central. La profundidad y naturaleza de sus cambios están relacionadas con la profundidad de los trastornos fisiopatológicos. La evaluación correcta de los síntomas licorológicos de laboratorio le permite aclarar el diagnóstico y evaluar la efectividad del tratamiento.

V.V. Profesor Bazarny de la USMA, Médico Jefe Adjunto del OKB No. 1

Introducción……………………………………………………………………………………..3

Métodos de laboratorio para estudiar el líquido cefalorraquídeo…………………………………….3

1. Fisiología del líquido cefalorraquídeo…………………………………………………………..3

   Composición y funciones del líquido cefalorraquídeo……………………………………………………3

   Etapa preanalítica………………………………………………………….7

   Métodos para las pruebas de laboratorio del líquido cefalorraquídeo………………………………..9

   1. Macroscopía del líquido cefalorraquídeo…………………………………………………………...9

      Examen microscópico del líquido cefalorraquídeo…………………………………….10

      Examen clínico general del líquido cefalorraquídeo……………………...15

      Estudio bioquímico del líquido cefalorraquídeo…………………………………………22

Conclusión……………………………………………………………………………………..31

INTRODUCCIÓN

Los estudios del LCR son una parte integral del diagnóstico de enfermedades que afectan el sistema nervioso central. El líquido cefalorraquídeo es una continuación directa del espacio extracelular y pericapilar del tejido nervioso, por lo que responde inmediatamente a cualquier cambio que se produzca en el cerebro. Según los parámetros fisicoquímicos y la composición celular del líquido cefalorraquídeo, se puede juzgar la naturaleza de la patología, su estadio y controlar el progreso del tratamiento. En el caso de infecciones virales del sistema nervioso central, los antígenos del patógeno se detectan en el líquido cefalorraquídeo; en el caso de infecciones bacterianas, los cuerpos microbianos se detectan mediante el método microscópico; mediante el método bacteriológico, se determina el tipo de bacteria y su sensibilidad a los antibióticos. determinado.

Las modernas capacidades de diagnóstico de laboratorio han ampliado significativamente la cantidad de información que se puede obtener como resultado de la punción lumbar. Creación de métodos altamente sensibles.

MÉTODOS DE LABORATORIO PARA EL ESTUDIO DEL LCR

Fisiología del líquido cefalorraquídeo.

El licor (líquido cefalorraquídeo) es un líquido biológico que lava las estructuras del sistema nervioso central. Su síntesis se produce en los plexos vasculares venosos de los ventrículos laterales del cerebro, desde donde el líquido ingresa al tercer ventrículo cerebral a través del agujero interventricular. Este último, a través del acueducto de Silvio, se comunica con el ventrículo IV, desde donde el líquido cefalorraquídeo pasa a través de las aberturas mediana y lateral hacia el espacio subaracnoideo de la médula espinal y el cerebro. Una pequeña parte del líquido también penetra en el espacio subdural.

Figura 1 – Esquema de las principales vías de formación del líquido cefalorraquídeo.

La formación de líquido cefalorraquídeo en los ventrículos laterales se produce de forma bastante intensa, por lo que se crea suficiente presión en su cavidad para que el líquido fluya en dirección caudal. Sin embargo, el líquido cefalorraquídeo no puede equipararse al filtrado de plasma sanguíneo, ya que se mezcla con el líquido extracelular del tejido nervioso que ingresa a través del epéndimo ventricular. Hasta cierto punto, también ocurre el proceso inverso: el flujo de líquido cefalorraquídeo a través del epéndimo hacia los neurocitos y las células gliales.

Los métodos modernos de investigación de radioisótopos han permitido establecer que el líquido cefalorraquídeo sale de la cavidad ventricular en unos pocos minutos y entra en el espacio subaracnoideo desde las cisternas en la base del cerebro en 4 a 8 horas. Un adulto secreta alrededor de 500 ml de líquido cefalorraquídeo por día, su cantidad en los conductos del líquido cefalorraquídeo es de 125 a 150 ml (10 a 14% de la masa del cerebro). En los ventrículos laterales hay 10-15 ml de líquido, en el III y IV un total de aproximadamente 5 ml, en el espacio craneal subaracnoideo - 30 ml, en el espacio espinal - 70-80 ml. Durante el día, el líquido cefalorraquídeo cambia hasta 3-4 veces en adultos y hasta 8 veces en niños.

La circulación del líquido cefalorraquídeo en el espacio subaracnoideo se produce a través de un sistema de canales de líquido cefalorraquídeo y células subaracnoideas. El flujo de líquido se acelera cuando cambia la posición del cuerpo en el espacio y bajo la influencia de las contracciones musculares. Hoy en día se cree que el líquido cefalorraquídeo situado en la región lumbar se mueve cranealmente en una hora, es posible que la circulación se produzca en ambas direcciones simultáneamente.

La salida de líquido cefalorraquídeo en un 30-40% se produce a través de las granulaciones paquionianas de la membrana aracnoidea hacia el seno sagital superior, que forma parte del sistema venoso de la duramadre. Aparecen en humanos a la edad de 1,5 años y crecen en la superficie exterior de la membrana aracnoidea a lo largo de los grandes senos y venas. Las granulaciones miran hacia la duramadre y no entran en contacto con la materia cerebral. El licor se acumula en el seno sagital superior, creando una presión de 15 a 50 mm Hg. más alto que el venoso, por lo que se produce la transición de líquido de los conductos licorosos al sistema circulatorio.

Figura 2 – Esquema de la relación entre las membranas del cerebro y las granulaciones de la membrana aracnoidea (granulaciones de Pachyon).

1 – duramadre; 2 – espacio subdural; 3 – membrana aracnoidea; 4 – espacio subaracnoideo; 5 – granulación de la membrana aracnoidea; 6 – seno sagital superior; 7 – laguna lateral; 8 – coroides.

La salida del líquido cefalorraquídeo también se produce a través de los canales del líquido cefalorraquídeo hacia el espacio subdural, desde donde ingresa a los capilares sanguíneos de la duramadre y pasa al sistema venoso. Además, ingresa parcialmente al sistema linfático a través de los espacios perineurales de los nervios craneales (5-30%), es absorbido por el epéndimo ventricular (10%) y ingresa al parénquima cerebral.

Composición y funciones del líquido cefalorraquídeo.

La composición del líquido cefalorraquídeo es similar al plasma sanguíneo y está formado por un 90% de agua y un 10% de materia seca. Contiene aminoácidos (20-25), proteínas (unas 14 fracciones), enzimas implicadas en el metabolismo del sistema nervioso, azúcar, colesterol, ácido láctico y unos 15 oligoelementos. Los neurotransmisores se determinan en el líquido cefalorraquídeo: acetilcolina, noradrenalina, dopamina, serotonina; hormonas: melatonina, endofinas, encefalinas, quininas.

Funciones del líquido cefalorraquídeo:

Protección mecánica de las estructuras del sistema nervioso central;

Excretor: los productos metabólicos se eliminan con el líquido;

Transporte: el líquido cefalorraquídeo sirve para transportar metabolitos, sustancias biológicamente activas, mediadores y hormonas;

Respiratorio: suministra oxígeno a las meninges y al tejido nervioso;

Homeostasis: mantiene un entorno estable del cerebro, neutraliza los cambios a corto plazo en la composición de la sangre, mantiene el pH en un cierto nivel, la presión osmótica en las células cerebrales, garantiza la excitabilidad normal del sistema nervioso central, crea presión intracraneal;

Inmunológico: participa en la creación de una barrera inmunobiológica específica del sistema nervioso central.

Las funciones del líquido cefalorraquídeo no se han estudiado completamente hasta el día de hoy, por lo que continúan los trabajos de investigación para su estudio.

Etapa preanalítica

Quincke obtuvo líquido cefalorraquídeo por primera vez para su investigación en 1891, tras lo cual su técnica se generalizó. Se realiza un análisis clínico general del líquido cefalorraquídeo dentro de las 3 horas posteriores a la recolección del material, por lo que el análisis de todo se realiza de manera urgente. Para obtener líquido cefalorraquídeo, en la mayoría de los casos se utiliza la punción lumbar, rara vez se utiliza la punción suboccipital y la punción ventricular se utiliza intraoperatoriamente.

La punción lumbar la realiza un neurólogo/anestesiólogo-resucitador en una sala de tratamiento, vestidor o quirófano. Se coloca al paciente de costado con las rodillas pegadas al pecho, después de lo cual se inserta una aguja en el espacio entre la cuarta y quinta vértebra lumbar en el espacio subaracnoideo. Se extraen las primeras cinco gotas de líquido cefalorraquídeo, ya que contienen sangre procedente de vasos sanguíneos dañados durante la manipulación. El líquido se recoge en 2 tubos estériles: uno de ellos se envía para estudios bioquímicos y citológicos, el otro se utiliza para detectar una película fibrosa o un coágulo. Si es necesario un cultivo bacteriológico, se llena un tercer tubo con líquido cefalorraquídeo. Sin peligro para la salud, se pueden tomar de 8 a 10 ml de líquido cefalorraquídeo de un adulto, de 5 a 7 ml de niños y de 2 a 3 ml de bebés.

No se puede agitar el biomaterial resultante ni exponerlo a cambios de temperatura, ya que esta criatura cambia sus parámetros. Todos los tubos antes del inicio del estudio están etiquetados, numerados, después de llenarlos, se cierran herméticamente y se envían inmediatamente al laboratorio. En la dirección deberás indicar:

Apellido, nombre, patronímico del paciente, su edad;

Departamento, sala, número de historial médico;

Fecha, hora y lugar de punción;

Propósito del estudio;

Diagnóstico presuntivo o clínico;

Datos del médico que envió el material para investigación.

2.4 Métodos para pruebas de laboratorio del líquido cefalorraquídeo.

2.4.1. Examen macroscópico

El examen macroscópico es toda la información sobre un biomaterial que un técnico de laboratorio puede obtener mediante los sentidos.

Color: normalmente, el líquido cefalorraquídeo es incoloro y no difiere en apariencia del agua. Su color se determina comparando un tubo de ensayo con material con el mismo tubo de ensayo lleno de agua sobre un fondo blanco. Puede cambiar en varios procesos patológicos:

rojo: una mezcla de glóbulos rojos inalterados (eritrocitos). Se puede determinar mediante tiras reactivas (HemoFAN), que tienen 2 escalas de comparación: una de ellas cambia de color en presencia de glóbulos rojos intactos, la otra en presencia de hemoglobina libre en el líquido cefalorraquídeo;

el color del xantocromo (amarillo, amarillo-marrón, rosa, marrón) se produce en presencia de oxihemoglobina, metahemoglobina y bilirrubina;

el color rosado del líquido cefalorraquídeo lo da la oxihemoglobina, liberada por los eritrocitos lisados;

El color amarillo se debe al alto contenido de bilirrubina, que se forma a partir de la hemoglobina. Para determinar la bilirrubinarquía y su gravedad se utilizan tiras reactivas (IctoFAN), cuya zona reactiva cambia de color de rosa pálido a rosa intenso según la concentración de bilirrubina;

la metahemoglobina y la metalbúmina dan el color marrón al líquido cefalorraquídeo, aparecen en presencia de hematomas encapsulados y hemorragias en el sistema nervioso central;

El color verde se produce con bilirrubinarquía pronunciada, ya que la bilirrubina se transforma en biliverdina, un pigmento de color oliva. A veces es causada por una mezcla de pus.

Transparencia: el líquido cefalorraquídeo normalmente es transparente; este parámetro se determina comparando el material resultante con agua destilada. Se observa una ligera turbidez del líquido cefalorraquídeo con leucocitosis superior a 200x10 6 /l, contenido de eritrocitos superior a 400x10 6 /l, proteína total superior a 3 g/l. Si después de la centrifugación el líquido cefalorraquídeo se vuelve transparente, entonces su turbidez se debe a elementos formados; si permanece turbio, es causada por microorganismos. La opalescencia del líquido cefalorraquídeo se produce con altas concentraciones de fibrinógeno.

Película fibrinosa: normalmente el líquido cefalorraquídeo tiene un bajo contenido de fibrina y no se forma una película durante la sedimentación. Un alto contenido de fibrina produce una delicada malla o película en las paredes del tubo de ensayo, un saco o un coágulo gelatinoso. El licor que contiene una gran cantidad de proteínas gruesas inmediatamente después de su liberación se coagula formando un coágulo gelatinoso.

2.4.2. Examen microscópico del líquido cefalorraquídeo.

Esta es una de las etapas más críticas del estudio del líquido cefalorraquídeo, según cuyos datos los diagnósticos a menudo se confirman o refutan.

El recuento del número de elementos formados se realiza dentro de los 30 minutos posteriores a la extracción del líquido cefalorraquídeo, seguido de la diferenciación celular. Para contar leucocitos La preparación se tiñe con uno de los siguientes reactivos:

• 5 ml de solución de ácido acético glacial al 10% + 0,1 violeta de metilo + agua hasta 50 ml – tiempo de tinción 2 minutos;

  Reactivo de Sansón: 2,5 ml de solución de alcohol de fucsina 1:10 + 30 ml de ácido acético + 2 g de ácido carbólico + agua destilada hasta 100 ml, tiempo de tinción 10-15 minutos.

La preparación coloreada se coloca en una cámara de Fuchs-Rosenthal de 3,2 µl. Los leucocitos se cuentan a bajo aumento en los 256 cuadrados, con pleocitosis alta de 200-1000x10 6 /l, se cuenta la mitad de la cuadrícula y el resultado se multiplica por 2, con pleocitosis superior a 1000x10 6 /l, se cuenta una fila de cuadrados grandes y el resultado se multiplica por 4. Los valores normales de citosis se indican en la tabla 1, para varios tipos de patología, en la tabla 2.

tabla 1

Citosis en líquido cefalorraquídeo lumbar

Tabla 2

Pleocitosis en diversas enfermedades.

Cantidad las células rojas de la sangre en el licor se cuentan en la cámara de recuento de Goryaev. Para hacer esto, el LCR mezclado con sangre se diluye 10 veces: en un tubo de ensayo se mezclan 9 partes de solución isotónica de cloruro de sodio y 1 parte de LCR. El líquido resultante se mezcla completamente, se llena la cámara de conteo de Goryaev y, de acuerdo con las reglas para contar el número de glóbulos rojos, se determina el número de glóbulos rojos en cinco cuadrados grandes. El número de glóbulos rojos en 1 µl de LCR se determina mediante la fórmula:

donde A es la cantidad de glóbulos rojos en 5 cuadrados grandes (80 pequeños), 1/400 es el volumen de un cuadrado pequeño, 10 es la dilución del líquido cefalorraquídeo, 80 es el número de cuadrados pequeños.

Al contar en una cámara de Fuchs-Rosenthal, las estructuras nucleares y citoplasmáticas son visibles en elementos celulares y formados teñidos con fucsina, lo que permite su diferenciación. Se evalúan con un aumento de 7x40. El registro de los resultados del conteo puede tener una expresión porcentual o numérica (licorograma). Teniendo en cuenta que los elementos formados y celulares pueden sufrir cambios degenerativos cuando permanecen en el LCR durante mucho tiempo, es necesario evaluar y contar los elementos formados y celulares en las preparaciones teñidas.

Las células del LCR tienen una afinidad por los tintes completamente diferente a la de las células sanguíneas, por lo que la selección de tintes debe ser diferente. Los siguientes tipos de tinción de preparaciones dan buenos resultados:

Coloración según Rosina. El LCR se centrifuga durante 7 a 10 minutos. Se escurre el líquido sobrenadante, se coloca el sedimento sobre un vaso desgrasado, se agita suavemente, se distribuye sobre la superficie del vaso y al cabo de 1-2 minutos se escurre el líquido. El vidrio se coloca en posición vertical y se seca en un horno a una temperatura de 40 a 50 ° C, después de lo cual se fija durante 1 a 2 minutos con metanol y se tiñe según Romanovsky: las preparaciones se tiñen durante 6 a 12 minutos. , dependiendo del espesor del frotis. La preparación se lava con agua destilada y se seca. Si los granos son de color azul pálido, el frotis se vuelve a pintar durante otros 2 a 3 minutos.

Coloración según Vozna. El sedimento obtenido durante la centrifugación se vierte sobre el vaso, agitándolo ligeramente y distribuyéndolo uniformemente sobre la superficie. Secar a temperatura ambiente durante 24 horas, fijar durante 5 minutos con alcohol metílico. Luego se tiñen con una solución de azur eosina (igual que para la tinción de sangre, pero diluida 5 veces) durante 1 hora, si las células son de color pálido se termina de teñir con pintura sin diluir bajo el control de un microscopio durante 2 a 10 minutos. . Cuantos más elementos se formen en el líquido cefalorraquídeo, especialmente en presencia de sangre, más largo será el color.

Tinción según Alekseev. Aplicar de 6 a 10 gotas de colorante Romanovsky-Giemsa sobre una preparación seca pero no fija; con la misma pipeta, distribuirla con cuidado por toda la preparación y dejar actuar durante 30 segundos. Luego agregue, sin escurrir la pintura, de 12 a 20 gotas de agua destilada, precalentada a una temperatura de 50 a 60 °C, en una proporción de 1: 2. Agitando la preparación, mezcle la pintura con agua y déjela por 3 minutos. . Lavar la pintura con un chorro de agua destilada, secar la preparación con papel de filtro y examinarla al microscopio. El método es adecuado para exámenes citológicos urgentes.

Los valores normales para el contenido de elementos celulares en el líquido cefalorraquídeo se presentan en la Tabla 3.

Tabla 3

Tecnología de citocentrifugación (citospin). La preparación de preparaciones coloreadas de líquido cefalorraquídeo a partir de líquido sedimentario después de la centrifugación no siempre permite obtener una fina capa de células adecuadas para el diagnóstico. Para resolver este problema, se desarrolló la tecnología de citocentrifugación, que implica la producción hardware de medicamentos de alta calidad. Para hacer esto, el líquido cefalorraquídeo resultante se prepara para su examen y se coloca en una citocámara, después de lo cual se dosifica en portaobjetos colocados verticalmente en el rotor de la citocentrífuga. Bajo la influencia de la fuerza centrífuga, las células se distribuyen uniformemente sobre el vidrio, mientras que el líquido más ligero se elimina de la superficie de la preparación. El secado, fijación y tinción de la preparación también se realiza en citocentrífuga. El dispositivo le permite crear hasta 8 zonas de diagnóstico en una diapositiva.

Células atípicas – la mayoría de las veces son células tumorales del sistema nervioso central o sus membranas. También pueden ocurrir en procesos inflamatorios crónicos (meningitis tuberculosa, meningoencefalitis, esclerosis múltiple, encefalomielitis); estas son células ependimarias de los ventrículos de la membrana aracnoidea, así como linfocitos, monocitos y plasmocitos con cambios en el núcleo y el citoplasma.

Celdas alteradas y sombras de celda se detectan durante una estancia prolongada en el LCR. Muy a menudo, los granulocitos neutrófilos, las células aracnoideas y el epéndimo ventricular sufren autólisis. Las células modificadas y las sombras de células no tienen valor diagnóstico.

Cristales en el licor rara vez se encuentran. En los días 4-5 después de una hemorragia subaracnoidea o una lesión cerebral traumática, se encuentran cristales de hemosiderina; en el caso de la desintegración del tumor, se pueden encontrar cristales de hematoidina, colesterol y bilirrubina en el contenido del quiste; también se forman cristales de colesterol en áreas de degeneración grasa, necrosis del tejido cerebral y en quistes cerebrales. Para detectar cristales en el LCR se utilizan las reacciones presentadas en la Tabla 4.

Tabla 4

Reacciones utilizadas para detectar cristales en licor.

Elementos de equinococo – En la equinococosis múltiple de las meninges se pueden detectar ganchos, escólex y fragmentos de la membrana quitinosa de la vejiga equinocócica. Se encuentran muy raramente.

El estudio de la composición celular del líquido cefalorraquídeo es importante en el diagnóstico de procesos patológicos en el sistema nervioso central. El estudio de la composición citológica del líquido cefalorraquídeo nos permite identificar las siguientes formas celulares: linfocitos, células plasmáticas, fagocitos mononucleares, neutrófilos, eosinófilos, basófilos, mastocitos, células ependimarias, plexos coroideos de los ventrículos, células atípicas, células tumorales. .

Para obtener un resultado preciso, es necesario contar las células dentro de los 30 minutos posteriores a la extracción del líquido cefalorraquídeo. Se ha establecido que la degradación de leucocitos y eritrocitos se produce debido a la baja concentración de proteínas que tienen un efecto estabilizador sobre las membranas celulares.

Los elementos celulares se pueden contar en el líquido cefalorraquídeo nativo o tratado utilizando una cámara de Fuchs-Rosenthal. La determinación de la citosis en el líquido cefalorraquídeo se suele realizar diluyéndolo previamente 10 veces con el reactivo de Samson. El reactivo de Sansón se prepara a partir de 30 ml de ácido acético glacial, 2,5 ml de una solución alcohólica de fucsina (1:10) y 2 g de fenol, ajustado a 100 ml con agua destilada. El reactivo es estable y permite mantener las células sin cambios durante varias horas. El ácido acético disuelve los glóbulos rojos y la fucsina tiñe los núcleos de los leucocitos de un color rojizo, lo que facilita el recuento y la diferenciación celular.

Los leucocitos se cuentan en 16 cuadrados grandes (256 pequeños) de la cámara de Fuchs-Rosenthal. El resultado obtenido se divide por el volumen de la cámara - 3,2 µl, determinando así el número de células en 1 µl y se multiplica por el grado de dilución del líquido cefalorraquídeo - 10.

Para convertir el resultado a unidades SI (celdas/l), multiplique por 106.

Normalmente, se detectan de 0 a 5,0 linfocitos o de 0 a 5,0 en 1 µl de líquido cefalorraquídeo. 106/l. En los niños, la citosis puede ser ligeramente mayor: hasta los 3 meses, 20-23 células por µl, al año - 14-15 células por µl, a los 10 años - 4-5 células por µl de líquido cefalorraquídeo.

Un aumento en la cantidad de células en el líquido cefalorraquídeo se llama pleocitosis y es un signo de enfermedad orgánica del sistema nervioso central. Pero muchas enfermedades pueden ocurrir incluso con un número normal de células. La pleocitosis es débil o leve a 5-50,106/l, moderada a 51-200,106/l, grave a 200-700,106/l, muy grave a más de 1000,106/l

El recuento de glóbulos rojos se realiza en la cámara Goryaev según el método tradicional, o en el líquido cefalorraquídeo nativo, primero se cuentan los leucocitos y luego los glóbulos rojos.

Para estudiar la morfología de los elementos celulares, el líquido cefalorraquídeo se centrifuga a 1500 rpm durante 10 minutos. Se escurre el líquido sobrenadante, se transfiere el sedimento a vidrio desgrasado y se seca en un termostato a 40-50 oC.

Un frotis de líquido cefalorraquídeo se puede teñir de diversas formas. Uno de ellos es la tinción según Rozina: los frotis se fijan con metanol durante 1 a 2 minutos, después de lo cual se tiñen según Romanovsky durante 6 a 12 minutos, dependiendo de la gravedad de la citosis. La pintura se lava con agua destilada. Cuando se tiñe según Vozna, el frotis se seca a temperatura ambiente durante 24 horas y luego se fija con metanol durante 5 minutos. Teñir con azur-eosina, preparado para teñir frotis de sangre y diluido 5 veces durante 1 hora. Cuantos más elementos celulares haya en el líquido cefalorraquídeo, especialmente en presencia de sangre, más tinción adicional será necesaria.

Para el examen citológico urgente del líquido cefalorraquídeo, se utiliza la tinción de Alekseev. Aplique de 6 a 10 gotas de pintura Romanovsky sobre una mancha no fijada y después de 30 segundos agregue (sin lavar la pintura) de 12 a 20 gotas de agua destilada calentada a 50-60 °C. La droga se deja durante 3 minutos. Lavar la pintura con agua destilada.

Al realizar la microscopía, los linfocitos se encuentran con mayor frecuencia: pequeños (5-8 µm) y medianos (8-12 µm), pero también pueden ser grandes (12-15 µm). Tienen un núcleo compacto con una estructura redondeada en bloques o con pequeñas depresiones en sus contornos. El citoplasma es basófilo, a menudo visible sólo en un lado. Normalmente, 1 µl de líquido cefalorraquídeo puede contener de 1 a 3 linfocitos. Pero con la encefalitis viral, la meningitis tuberculosa y serosa aguda, la cantidad de linfocitos aumenta significativamente. En condiciones patológicas predominan los linfocitos medianos y grandes.

Además, con la neurosífilis prolongada, la meningitis tuberculosa y la esclerosis múltiple, se encuentran células plasmáticas: son más grandes, de 8 a 20 micrones de diámetro con límites claramente definidos. Los núcleos tienen forma esférica, están ubicados excéntricamente, el citoplasma es intensamente basófilo, a menudo tiene una zona de aclaramiento perinuclear y, a veces, contiene pequeñas vacuolas a lo largo de la periferia de las células. Las células plasmáticas son una de las fuentes de inmunoglobulinas de clase G en el líquido cefalorraquídeo.

Los monocitos se encuentran en forma de células individuales en el líquido cefalorraquídeo (células con un diámetro de 12 a 20 micrones con un núcleo de varias formas y tamaños), con forma de frijol, con forma de herradura y lobulados. La cromatina en el núcleo aparece enrollada y plegada. El citoplasma se tiñe intensamente basófilo. Los monocitos se encuentran en grandes cantidades durante los procesos inflamatorios crónicos en las membranas del cerebro, después de una cirugía cerebral.

Los macrófagos, células grandes de 20 a 60 μm con un núcleo pequeño, aparecen en el sistema nervioso central durante la hemorragia parenquimatosa o subaracnoidea. Un número significativo de macrófagos en el líquido cefalorraquídeo después de la cirugía indica un buen pronóstico, su ausencia total es un signo desfavorable.

La presencia de neutrófilos en el líquido cefalorraquídeo, incluso en cantidades mínimas, indica una reacción inflamatoria anterior o existente. Pueden ocurrir en presencia de sangre fresca en el líquido cefalorraquídeo y después de operaciones en el sistema nervioso central, con meningitis viral en los primeros días de la enfermedad. La aparición de neutrófilos es un signo de exudación, una reacción asociada con el rápido desarrollo de cambios necróticos en las células del sistema nervioso. Debido a las propiedades citolíticas del líquido cefalorraquídeo, los neutrófilos sufren cambios: el núcleo se lisa o el citoplasma se lisa y queda un núcleo desnudo. La presencia de células alteradas indica la atenuación del proceso inflamatorio.

Los mastocitos se producen principalmente después de una cirugía en el sistema nervioso central. Tienen la apariencia de células de forma irregular con invaginaciones cortas del citoplasma o procesos alargados. El grano es pequeño, de forma alargada u ovalada. El citoplasma es abundante con granularidad basófila gruesa y desigual.

Células atípicas: la mayoría de las veces son células tumorales del sistema nervioso central o sus membranas. Se trata de células del epéndimo de los ventrículos, de la membrana aracnoidea, así como de linfocitos, monocitos, plasmocitos con cambios en el núcleo y citoplasma.

Bolas granulares o lipófagos: incluyen gotitas de grasa en el citoplasma. En el frotis parecen estructuras celulares con un núcleo pequeño. Se encuentran en el líquido patológico obtenido de quistes cerebrales durante la descomposición del tejido cerebral.

Las células tumorales del sistema nervioso central se encuentran en pacientes con tumores cerebrales primarios y metastásicos. Pueden aparecer células de astrocitoma, ependioma, melanoma, cáncer y otros tumores. Su rasgo característico es:

• - la presencia de células de diferentes tamaños y formas en una preparación,
• - aumento del número y tamaño de los núcleos,
• -hipercromatismo nuclear,
• - mitosis anormales,
• -fragmentación de la cromatina,
• -basofilia citoplasmática,
• -la aparición de un grupo de células.

Células de ependioma

Tumor de células gigantes en indenoma hipofisario

El estudio de estas células requiere un conocimiento especial y profundo.

En el contenido de los quistes se encuentran cristales de hematoidina, colesterol y bilirrubina. Los elementos de Echinococcus (ganchos, escólex y fragmentos de la membrana quitinosa de la vejiga) rara vez se encuentran en la equinococosis de las meninges.

La meningitis es una enfermedad cerebral peligrosa que provoca discapacidad y, en ausencia de atención médica, la muerte. Dado que el líquido cefalorraquídeo cambia sus propiedades durante la meningitis, el médico, después de examinarlo, puede hacer un diagnóstico preciso y prescribir inmediatamente el tratamiento necesario. El líquido cefalorraquídeo se extrae mediante punción lumbar (punción). No hay por qué tener miedo de este procedimiento, ya que le ayuda a elegir el método de tratamiento más eficaz.

El líquido cefalorraquídeo controla la funcionalidad del sistema nervioso. Para obtenerlo, el médico realiza una punción lumbar al paciente. Funciones del líquido cefalorraquídeo:

• proteger el cerebro del daño y la exposición a factores mecánicos;
• mantener una presión óptima dentro del cráneo;
• promover procesos metabólicos entre el cerebro y el ambiente fluido del cuerpo;
• evacuar productos metabólicos;
• Mantener el funcionamiento de partes del cerebro.

El volumen total de líquido cefalorraquídeo oscila entre 140 y 270 metros cúbicos. cm. Está formado por secreción de células ubicadas en las conexiones vasculares de los ventrículos del cerebro. Cada día se producen aproximadamente 700 metros cúbicos. ver líquido cefalorraquídeo.

Indicadores normales

Normalmente, el líquido cefalorraquídeo tiene los siguientes indicadores:

• densidad: de 1,005 a 1,009;
• la presión debe estar entre 100 y 200 milímetros de agua;
• no debe haber colorantes;
• citosis (por 1 microlitro): líquido ventricular - hasta 1, líquido cisternal - hasta 1, líquido lumbar - dentro de 2-3);
• índice alcalino: de 7,31 a 7,33;
• proteína total: de 0,16 a 0,33 gramos por litro;
• indicador de glucosa: de 2,8 a 3,9 mmol por litro;
• cloro (iones) - 120-128 milimoles.

La meningitis es una indicación absoluta de punción lumbar. Este procedimiento está prohibido si:

• hinchazón severa del tejido cerebral (el procedimiento puede causar un gran daño);
• un fuerte salto en la presión del líquido cefalorraquídeo;
• la presencia de una gran formación dentro del cerebro;
• hidropesía.

La realización de un procedimiento de punción en caso de hidrocefalia y en caso de un aumento de presión dentro del cráneo puede provocar una afección en la que un trozo de tejido cerebral se extiende hasta la abertura de la parte posterior de la cabeza. Al mismo tiempo, se interrumpe el trabajo de los centros de apoyo a la vida humana más importantes.

Durante la punción, la persona se acuesta de costado, inclina la cabeza hacia el pecho y lleva las piernas dobladas por la articulación de la rodilla hacia el estómago. Esta posición garantiza una accesibilidad óptima al lugar de punción. Se encuentra entre la tercera y cuarta vértebra en la zona lumbar. Ya no hay médula espinal en este lugar.

Se aplica alcohol en el lugar de la punción y se inyecta un anestésico debajo de la piel. La piel se perfora con una aguja especial con punta. Si se inserta correctamente, el líquido cefalorraquídeo comienza a liberarse a través de la aguja.

Características del análisis

El líquido cefalorraquídeo durante la meningitis se examina de acuerdo con ciertas reglas. Las primeras gotas no caen en el tubo de ensayo y se retiran con cuidado porque contienen una mezcla de sangre. El líquido debe estar en un tubo estéril y químicamente limpio. Se recoge en dos recipientes: uno se envía para análisis clínicos químicos y generales, y el otro para análisis bacteriológicos.

Todas las muestras de licor están cuidadosamente protegidas contra el sobrecalentamiento y el enfriamiento. Para determinar los cuerpos bacterianos, también se calientan.

El análisis de líquidos se realiza en varias etapas:

• evaluación de color, volumen, medición de densidad relativa;
• contar células en la muestra (calculadas por 1 ml);
• examen microscópico de la muestra;
• examen citológico de la muestra teñida;
• análisis bioquímico;
• microscopía.

Desviaciones de los indicadores normales - video

En presencia de enfermedades cerebrales, el líquido cefalorraquídeo cambia sus características:

• Si contiene microorganismos patógenos, se vuelve gris verdoso. En el líquido se encuentra una gran cantidad de leucocitos.
• El color rojo del líquido cefalorraquídeo indica la presencia de glóbulos rojos. Ocurre con daño inflamatorio intenso o después de una lesión.
• Con el desarrollo de procesos inflamatorios en el cuerpo, el líquido cefalorraquídeo se vuelve amarillo e incluso marrón, y en él se encuentran productos de descomposición de la hemoglobina. Esta condición se llama xantocromía.

• También es posible una coloración falsa del líquido cefalorraquídeo. Ocurre con el uso prolongado de ciertos medicamentos.
• El color verde del licor se produce con una inflamación purulenta del revestimiento del cerebro.
• La ruptura del quiste lo vuelve oscuro.
• Cuando se citosan elementos proteicos, el líquido cefalorraquídeo se vuelve opalescente.
• El proceso patológico en las meninges aumenta la densidad del líquido cefalorraquídeo a 1,015.
• Cantidades elevadas de fibrinógeno promueven el crecimiento de coágulos y películas de fibrosis. Normalmente, estos fenómenos ocurren durante el desarrollo del proceso tuberculoso.

A veces se encuentran enzimas en el licor. Normalmente, debería contener pocas enzimas. Un aumento en el contenido de estas sustancias puede indicar una alteración de la actividad cerebral.

En la meningitis, contar el número de células microbianas es de particular importancia.. Este número es fundamental para determinar un diagnóstico preciso y seleccionar un método de tratamiento. Se utilizan los siguientes métodos de cálculo:

• determinación del número de células que se tiñen mediante el método Romanovsky Giemsa o Nokhtu);
• conteo de elementos del licor usando una cámara de Fuchs y Rosenthal. En su ausencia, se utiliza la cámara Goryaev.

El aumento de células en el líquido cefalorraquídeo durante la meningitis se llama pleocitosis. A menudo se diagnostica durante enfermedades inflamatorias. Este fenómeno es más pronunciado en la forma tuberculosa de meningitis.

La tinción con la solución de Samson permite diferenciar con precisión las células microbianas y de otro tipo. Con la meningitis, aumenta la cantidad de linfocitos, neutrófilos, monocitos, eosinófilos y basófilos. Al médico le interesa la cantidad de todos estos elementos.

La fuga lenta de líquido cefalorraquídeo, la imposibilidad de obtenerlo, la coloración pronunciada, la discrepancia entre el estado grave del paciente y la composición del líquido, la coagulación pronunciada del líquido cefalorraquídeo indica que el paciente está desarrollando tipos de meningitis bloqueadas.

La presencia de células atípicas en el líquido manteniendo su transparencia y la ausencia de un mayor contenido de proteínas no confirma el diagnóstico de meningitis. El paciente es remitido para estudios adicionales, ya que este signo puede indicar la progresión de un proceso maligno en el cerebro.

El licor en este caso es heterogéneo. Una característica del proceso de la enfermedad es que la cantidad de células y microorganismos patológicamente alterados en el líquido cefalorraquídeo aumenta rápidamente. Si se sospecha que el paciente desarrolla meningitis purulenta, se debe realizar un examen general a más tardar 60 minutos después de la punción lumbar.

El líquido en el canal espinal con meningitis purulenta suele ser opaco y de color verde o lechoso. Los estudios de laboratorio confirman el crecimiento de neutrófilos, la propagación de indicadores de todos los elementos formados.

Si la cantidad de neutrófilos en el líquido cefalorraquídeo disminuye significativamente, esto indica que el resultado de la enfermedad es favorable. El análisis del líquido cefalorraquídeo durante la meningitis ayuda a determinar la gravedad del proceso patológico.

En presencia de formaciones purulentas, la cantidad de proteína aumenta, pero con un saneamiento oportuno comienza a disminuir. La combinación de pleocitosis y proteínas elevadas indica un pronóstico desfavorable para la meningitis.

En la variedad purulenta de la enfermedad, hay una disminución de la glucosa en el líquido cefalorraquídeo.. Si su cantidad aumenta, esto indica una regresión de la enfermedad.

Las pruebas de laboratorio para detectar microorganismos del tipo de meningitis tuberculosa no arrojan resultados positivos. Un estudio más exhaustivo del líquido cefalorraquídeo ayuda a detectar la presencia de un patógeno en él.

La precipitación se puede notar no antes de 12 horas después del análisis. El sedimento parece una red de fibrina en forma de red o escamas. En él se puede encontrar una gran cantidad de Mycobacterium tuberculosis.

Durante el proceso tuberculoso, el líquido cefalorraquídeo permanece transparente, sin coloración perceptible. La citosis ocurre en un rango bastante amplio y difiere según la etapa de la meningitis. En ausencia de tratamiento etiotrópico, el número de células siempre aumenta. Las muestras repetidas de líquido cefalorraquídeo después del inicio de la terapia observaron una disminución en el número de células.

Un rasgo característico del desarrollo de la patología es la presencia de linfocitos en el líquido cefalorraquídeo. Si aumenta el nivel de monocitos y macrófagos, esta es una mala señal. Los neutrófilos y los linfocitos gigantes se pueden encontrar en grandes cantidades en el líquido cefalorraquídeo. La proteína en esta patología suele aumentar, su nivel puede alcanzar los 3 gramos por litro.

El nivel de glucosa en el líquido cefalorraquídeo con meningitis tuberculosa disminuye drásticamente a 0,8 mmol. A veces el nivel de cloruro también disminuye. Un indicador favorable es un aumento en el nivel de estos indicadores del líquido cefalorraquídeo.

Es obligatorio un examen bacteriano del líquido cefalorraquídeo para establecer el tipo de patógeno. Si el análisis se realizó el primer día después de la hospitalización, en casi todos los casos se detectan microorganismos patológicos. Al tercer día del desarrollo de la enfermedad, la cantidad de microbios disminuye significativamente.

Los cambios en el líquido cefalorraquídeo pasan por varias etapas:

• aumento del nivel de presión intracraneal;
• desarrollo de tipo de citosis neutrofílica;
• la aparición de cambios que indican el desarrollo de un tipo purulento de meningitis.

Si la meningitis no se trata o no se trata correctamente, se encuentran bacterias en el líquido cefalorraquídeo del paciente. Aumenta la cantidad de proteínas y neutrófilos. Cuanta más proteína, más grave es la enfermedad.

En la forma neumocócica de meningitis, el líquido es turbio, purulento y, a veces, se vuelve verde. El número de neutrófilos es moderado. Las proteínas pueden alcanzar hasta 10 gramos por litro o incluso más.

En la meningitis serosa, el líquido cefalorraquídeo suele ser claro con la presencia de una pequeña cantidad de linfocitos. En la etapa inicial de la enfermedad se observa cierta acumulación de neutrófilos. Este indica un curso complicado de la enfermedad y generalmente indica un pronóstico desfavorable para la meningitis.

Muy a menudo, los niveles de proteínas fluctúan dentro de los límites normales. En algunos pacientes, la cantidad de esta sustancia en el líquido cefalorraquídeo disminuye ligeramente, lo que se debe a un aumento en la producción de líquido cefalorraquídeo. La pleocitosis aumenta sólo en el caso de la meningitis causada por el virus Coxsackie. En el caso del herpes, por el contrario, está casi ausente.

Durante la etapa de recuperación, el paciente presenta linfocitosis. En los casos leves, se nota ya al tercer día de la enfermedad. En la meningitis serosa causada por el virus de las paperas, el líquido cefalorraquídeo suele ser transparente y sin color. Revela la presencia de linfocitos y el nivel de iones cloruro y glucosa aumenta ligeramente.

El examen del líquido cefalorraquídeo durante la meningitis es obligatorio: solo así se puede determinar si un paciente tiene inflamación de las meninges y elegir la terapia más adecuada. No debe tener miedo de dañar la médula espinal, ya que no hay ninguna médula espinal en el lugar de la punción. Después de recibir el material biológico, el asistente de laboratorio lo estudia inmediatamente. Esto debe hacerse lo más rápido posible, porque algunas formas de meningitis progresan rápidamente y cada segundo es valioso para la recuperación del paciente.